Regulation of the activity of adenylate cyclases by hydrogen peroxide in pea root cells Infected with pathogens and a mutualist
- Authors: Kuzakova O.V.1, Lomovatskaya L.A.1, Romanenko A.S.1, Goncharova A.M.1
-
Affiliations:
- Siberian Institute of Plant Physiology and Biochemistry, SB RAS
- Issue: Vol 10, No 3 (2020)
- Pages: 450-458
- Section: Physico-chemical biology
- URL: https://ogarev-online.ru/2227-2925/article/view/300766
- DOI: https://doi.org/10.21285/2227-2925-2020-10-3-450-458
- ID: 300766
Cite item
Full Text
Abstract
About the authors
O. V. Kuzakova
Siberian Institute of Plant Physiology and Biochemistry, SB RAS
Email: titanic87@list.ru
L. A. Lomovatskaya
Siberian Institute of Plant Physiology and Biochemistry, SB RAS
Email: lidal@sifibr.irk.ru
A. S. Romanenko
Siberian Institute of Plant Physiology and Biochemistry, SB RAS
Email: rom@sifibr.irk.ru
A. M. Goncharova
Siberian Institute of Plant Physiology and Biochemistry, SB RAS
Email: alvlad87@mail.ru
References
- Кузакова О.В., Ломоватская Л.А., Гончарова А.М., Романенко А.С. Влияние различных по симбиотической эффективности штаммов Rhizobium leguminosarum bv. viciae на изменение концентрации цАМФ и пероксида водорода в клетках проростков гороха // Физиология растений. 2019. Т. 66. N 5. С. 360–366. https://doi.org/10.1134/s0015330319050129
- Jiang J., Fan L.W., Wu W.H. Evidences for involvement of endogenous cAMP in Arabidopsis defense responses to Verticillium toxins // Cell Research. 2005. Vol. 15. Issue 8. P. 585–592. https://doi.org/10.1038/SJ.CR.7290328
- Ломоватская Л.А., Кузакова О.В., Романенко А.С., Гончарова А.М. Активность аденилатциклаз и изменение концентрации цАМФ в клетках корня проростков гороха при инфицировании мутуалистами и фитопатогенами // Физиология растений. 2018. Т. 65. N 4. С. 310–320. https://doi.org/10.7868/S0015330318040073
- Bianchet C., Wong A., Quaglia M., Alqurashi M., Gehring C., Ntoukakis V., et al. An Arabidopsis thaliana leucine-rich repeat protein harbors an adenylyl cyclase catalytic center and affects responses to pathogens // Journal of Plant Physiology. 2019. Vol. 232. Р. 12–22. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2018.10.025
- Филинова Н.В., Ломоватская Л.А., Романенко А.С., Саляев Р.К. Кальций как модулятор активности аденилатциклазы клеток растений картофеля при бактериальном патогенезе // Доклады Академии наук. 2018. Т. 483. N 6. С. 687–689. https://doi.org/10.31857/S086956520003458-6
- Молодченкова О.О. Активность НАДФН-оксидазы, содержание пероксида водорода и салициловой кислоты в проростках ярового ячменя при фузариозной инфекции и действии салициловой кислоты // Физиология и биохимия культурных растений. 2009. Т. 41. N 4.С. 321–326.
- Ткачук В.А., Тюрин-Кузьмин П.А., Белоусов В.В., Воротников А.В. Пероксид водорода как новый вторичный посредник // Биологические мембраны. 2012. Т. 29. N 1-2. С. 21–37.
- Černý M., Habánová H., Berka M., Luklová M., Brzobohatý B. Hydrogen peroxide: its role in plant biology and crosstalk with signalling networks // International Journal of Molecular Sciences. 2018. Vol. 19. Issue 9. P. 2812. https://doi.org/10.3390/ijms19092812
- Ломоватская Л.А., Романенко А.С., Рыкун О.В. Влияние Са 2+ и Н 2 О 2 на изменение уровня цАМФ в вакуолях клеток корнеплодов столовой свеклы при биотическом стрессе // Биологические мембраны. 2014. Т. 31. N 3. С. 194–203. https://doi.org/10.7868/s0233475514020042
- Romanenko A.S., Lomovatskaya L.A., Shafikova T.N., Borovskii G.B., Krivolapova N.V. Potato cell membrane receptors to ring rot pathogen extracellular polysaccharides // Journal of Phytopathology. 2003. Vol. 151. Issue 1. 6 p. https://doi.org/10.1046/j.1439-0434.2003.00667.x
- Lomovatskaya L.A., Romanenko A.S., Filinova N.V., Dudareva L.V. Determination of cAMP in plant cells by a modified enzyme immunoassay method // Plant Cell Reports. 2011. Vol. 30. Issue 1. P. 125–132. https://doi.org/10.1007/s00299-010-0950-5
- Galletti R., Denoux C., Gambetta S., Dewdney J., Ausubel F.M., De Lorenzo G., et al. The AtrbohD-mediated oxidative burst elicited by oligogalacturonides in Arabidopsis is dispensable for the activation of defense responses effective against Botrytis cinerea // Plant Physiology. 2008. Vol. 148. Issue 3. P. 1695–1706. https://doi.org/10.1104/pp.108.127845
- Glyan’ko A.K., Vasil’eva G.G. Reactive oxygen and nitrogen species in legume-rhizobial symbiosis: A review // Applied biochemistry and microbiology. 2010. Vol. 46. Issue 1. P. 15–22. https://doi.org/10.1134/S0003683810010023
- Jamet A., Mandon K., Puppo A., Hérouart D. H 2 O 2 is required for optimal establishment of the Medicago sativa/Sinorhizobium meliloti symbiosis // Journal of Bacteriology. 2007. Vol. 187. Issue 23. P. 8741–8745. https://doi.org/10.1128/JB.01130-07
- Suzuki N., Katano K. Coordination between ROS regulatory systems and other pathways under heat stress and pathogen attack // Frontiers in Plant Science. 2018. Vol. 9. P. 490. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.00490
- Веселов А.П., Чуманкина Е.А., Маркина И.В. Влияние экзогенного пероксида водорода на липопероксидацию и ферменты антиоксидантной защиты изолированных хлоропластов гороха // Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского. 2001. N 1. С.164–167.
- Лукаткин А.С. Вклад окислительного стресса в развитие холодового повреждения в листьях теплолюбивых растений. Повреждение клеточных мембран при охлаждении теплолюбивых растений // Физиология растений. 2003. Т. 50. N 2. С. 271–274.
- Stadtman E.R., Levine R.L. Free radicalmediated oxidation of free amino acids and amino acid residues in proteins // Amino Acids. 2003. Vol. 25. P. 207–218. https://doi.org/10.1007/s00726-003-0011-2
- Al-Younis I., Wong A., Gehring G. The Arabidopsis thaliana K+-uptake permease 7 (AtKUP7) contains a functional cytosolic adenylate cyclase catalytic centre // FEBS Letters. 2015. Vol. 589. Issue 24 (Pt B). P. 3848–3852. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2015.11.038
- Chatukuta P., Dikobe T.B., Kawadza D.T., Sehlabane K.S., Takundwa M.M., Wong A., et al. An Arabidopsis clathrin assembly protein with a predicted role in plant defense can function as an adenylate cyclase // Biomolecules. 2018. Vol. 8. N 2. 15 p. https://doi.org/10.3390/biom8020015
- Gehring C. Adenyl cyclases and cAMP in plant signaling – past and present // Cell Communication and Signaling. 2010. Vol. 8. 5 p. https://doi.org/10.1186/1478-811X-8-15
- Chang J.H., Desveaux D., Creason A.L. The ABCs and 123s of bacterial secretion systems in plant pathogenesis // Annual Review Phytopathology. 2014. Vol. 52. P. 317–345. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-011014-015624
- Demidchik V. ROS-Activated ion channels in plants: biophysical characteristics, physiological functions and molecular nature // International Journal of Molecular Sciences. 2018. Vol. 19. Issue 4. P.1263. https://doi.org/10.3390/ijms19041263
- Eichenlaub R., Gartemann K.-H. The Clavibacter michiganensis subspecies: molecular investigation of gram-positive bacterial plant pathogens // Annual Review Phytopathology. 2011. Vol. 49. P. 445–64. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-072910-095258
- Романенко А.С., Граскова И.А., Рифель А.А., Копытчук В.Н., Раченко М.А. Стабилизация корнями картофеля рН среды, смещаемого возбудителем кольцевой гнили // Физиология растений. 1996. Т. 43. N 5. С. 707–712.
- Пятыгин С.С. Особенности сигнальной роли потенциала действия у высших растений // Успехи современной биологии. 2007. Т. 127. N 3. С. 293–298.
Supplementary files
