Choosing trigger of ovulation for optimization of in vitro fertilization programs (literature review)


如何引用文章

全文:

详细

This review presents recent data on the impact of different triggers on the clinical and embryological indicators of the effectiveness of assisted reproductive technology in patients with normal and excessive ovarian response to superovulation. Triggering with gonadotropin releasing hormone agonist can be a real alternative to human chorionic gonadotropin triggering: gonadotropin-releasing hormone agonists trigger reduces the risk of ovarian hyperstimulation syndrome. When modifying the luteal phase, the pregnancy rate after gonadotropin-releasing hormone agonists triggering is comparable with that of human chorionic gonadotropin triggering human chorionic gonadotropin in in vitro fertilization programs.

作者简介

S Eapen

I.M.Sechenov First Moscow State Medical University

Email: dr.snehaeapen@gmail.com
аспирант каф. акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ИПО ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М.Сеченова 119991, Russian Federation, Moscow, ul. Trubetskaia, d. 8, str. 2

N Mishiyeva

V.I.Kulakov Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: nondoc555@mail.ru
д-р мед. наук, вед. науч. сотр. 1-го гинекологического отд-ния ФГБУ НЦАГиП им. акад. В.И.Кулакова 117997, Russian Federation, Moscow, ul. Akademika Oparina, d. 4

B Martazanova

V.I.Kulakov Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: bellamart88@mail.ru
аспирант ФГБУ НЦАГиП им. акад. В.И.Кулакова 117997, Russian Federation, Moscow, ul. Akademika Oparina, d. 4

T Dontsova

V.I.Kulakov Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: dr.dontsova@gmail.com
клин. ординатор ФГБУ НЦАГиП им. акад. В.И.Кулакова 117997, Russian Federation, Moscow, ul. Akademika Oparina, d. 4

S Pavlovich

I.M.Sechenov First Moscow State Medical University; V.I.Kulakov Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: st.pavlovich@mail.ru
канд. мед. наук, доц., врач высшей категории, ученый секретарь ФГБУ НЦАГиП им. акад. В.И.Кулакова, проф. каф. акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ИПО ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М.Сеченоваж 119991, Russian Federation, Moscow, ul. Trubetskaia, d. 8, str. 2

参考

  1. Ascoli M, Fanelli F, Segaloff D.L. The lutropin/choriogonadotropin receptor, a 2002 perspective. Endor Rev 2002; 23: 141-74.
  2. Kessler M.J, Reddy M.S, Shah R.H, Bahl O.P. Structures of N-glycosidic carbohydrate units of human choronic gonadotropins. J Biochem 1979; 254: 7901-8.
  3. Itskovitz J, Boldes R, Levron J et al. Induction of preovulatory luteinizing hormone surge and prevention of ovarian hyperstimulation syndrome by gonadotropin - releasing hormone agonists. Fertil Steril 1991; 56 (2): 213-20.
  4. Hoff J.D, Quigley M.E, Yen S.S. Hormonal dynamics at midcycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab 1983; 57: 792-6.
  5. Fauser B.C, Devroey P. Reproductive biology and IVF: ovarian stimulation and luteal consequences. Trends Endocrinol Metab. 2003; 4: 236-42.
  6. Mc Elhinney B, Ardill J, Caldwell C et al. Ovarian hyperstimulation syndrome and assisted reproductive technologies: why some and not others? Hum Reprod 2002; 17 (6): 1548-53.
  7. Мартазанова Б.А., Вторушина В.В., Ипен С.М. и др. Содержание ангиогенных факторов и интерлейкина-8 в сыворотке крови и фолликулярной жидкости пациенток с высоким риском развития синдрома гиперстимуляции яичников при замене триггера овуляции. Акушерство и гинекология. 2015; 1: 58-65.
  8. Chen S.U, Chou C.H, Lin C.W et al. Signal mechanisms of vascular endothelial growth factor and interleukin-8 in ovarian hyperstimulation syndrome: dopamine targets their common pathways. Hum Reprod 2010; 25 (3): 757-67.
  9. Castillo J.C, Humaidan P, Bernabeu R. Pharmaceutical options for triggering of final oocyte maturation in ART. BioMed Res Int 2014; article ID 580171.
  10. Кулаков В.И., Калинина Е.А., Корнеева И.Е. и др. Лечение синдрома гиперстимуляции яичников, как осложнение программы ЭКО и ПЭ. В кн.: Лечение женского и мужского бесплодия. Вспомогательные репродуктивные технологии в лечении женского и мужского бесплодия. Под ред. В.И.Кулакова. М., 2005.
  11. Mocanu E., Redmond M.L, Hennelly B et al. 2007 Odds of ovarian hyperstimulation syndrome (OHSS)-time for reassessment.Human Fertility 10,175-181.
  12. Delvigne A, Rozenberg S. Review of clinical course and treatment of ovarian hyperstimulation syndrome. Human Reproduction Update 2003;9:77-96.
  13. Engmann L, Di-Luigi A, Schmidt D et al. The use of gonadotropin releasing hormone (GnRH) agonist to induce oocyte maturation after cotreatment with GnRH antagonist in high - risk patients undergoing in vitro fertilization prevents the risk of ovarian hyperstimulation syndrome: a prospective randomized controlled study. Fertil Steril 2008; 89 (1): 84-91. DOI: :10.1016/j.fertnstert.2007.02.002
  14. Al-Shawaf T, Grudzinskas J.G. Prevention and treatment of ovarian hyperstimulation syndrome. Best Pract Res Clin Obstet Gynecol 2003; 17: 249-61.
  15. Mathur R.S Akande A.V, Keay S.D et al. Distinction between early and late ovarian hyperstimulation syndrome. Fertil Steril 2000; 73: 901-7.
  16. Корнеева И.Е., Иванова А.В., Баркалина Н.В. Синдром гиперстимуляции яичников: профилактика, диагностика, лечение (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2004; 10 (1): 43-50.
  17. Назаренко Т.А. Стимуляция функции яичников. М., 2009.
  18. Diedich K, Diedich C, Santos E. Suppression of the endogenous luteinizing hormone surge by the gonadotrophin - releasing hormone antagonist Cetrorelix during controlled ovarian hyperstimulation. Hum Reprod 1994; 9 (5): hh 788-91.
  19. Albano C, Smitz J, Camus M et al. Comparison of different doses of gonadotropin - releasing hormone antagonist Cetrorelix during controlled ovarian hyperstimulation. Fertil Steril 1997; 67 (5): 917-22.
  20. Gordon K, Williams R.F, Danforth D.R, Hodgen G.D. The combined use of GnRH antagonists with gonadotrophins or pulsatile GnRH in ovulation induction. In: Bouchard P, Caraty A, Coelingh-Bennink H.J.T, Pavlou S.N (eds). GnRH-Analougs, Gonadotrophins and Gonadal Peptides. London: Parthenon Publishing Group, 1993.
  21. Gonen Y, Balakier H, Powell W, Casper R.F. Use of GnRh agonist to trigger follicular Maturation for in vitro fertilization. J Clin Endocrinol Metab 1990; 71: 918-22.
  22. Itskovitz J, Boldes R, Levron J et al. Induction of preovulatory luteinizing hormone surge and prevention of ovarian hyperstimulation syndrome by gonadotropin - releasing hormone agonist. Fertil Steril 1991; 56: 213-20.
  23. Hoff J.D, Quigley M.E, Yen S.S. Hormonal dynamics at mid cycle: a reevaluation. J Clin Endocrinol Metab 1983; 57: 792-6.
  24. Zelinski-Wooten M.B, Hutchinson J.S, Hess D.L et al. Follicle stimulating hormone alone supports follicle growth and oocyte development in gonadotrophin releasing hormone antagonist - treated monkeys. Hum Reprod 1995; 10: 1658-66.
  25. Yding Anderson C, Leonardsen L, Ulloa-Aguirre A et al. FSH-induced resumption of meiosis in mouse oocytes: effect of different isoforms. Mol Hum Reprod 1999; 5: 726-31.
  26. Stickland S, Beer W.H. Studies on the role of plasminogen activator in ovulation. In vitro response of granulose cells to gonadotropins, cyclic nucleotides and prostaglandins. J Biol Chem 1976; 251: 5694-702.
  27. Eppig J.J. FSH stimulates hyaluronic acid synthesis by oocyte - cumuluc cell complexes from mouse preovulatory follicles. Nature 1979; 281: 483-4.
  28. Atef A, Francois P, Christian V, Marc-Andre S. The potential role of gap junction communication between cumulus cells and bovine ocytes during in vitro maturation. Mol Reprod Dev 2005; 71 (3): 358-67.
  29. Godard N.M, Pukazhenthi B.S, Wildt D.T, Comizzoli P. Paracrine factors from cumulus - enclosed ocytes ensure the successful maturation and fertilization in vitro of denuded oocytes in the cat model. Fertil Steril 2009; 91 (Suppl. 5): 2051-60.
  30. Lamb J.D, Mc Culloch C, Jalalian L et al. Follicle stimulating hormone administered at the time of human chorionic gonadotropin trigger improves oocyte developmental competence in in vitro fertilization cycles: a randomized, double - blind, placebo - controlled trial. Fertil Steril 2011; 95: 1655-60.
  31. D’Alessandris C, Canipari R, Di Giacomo M et al. Control of mouse cumulus cell - oocyte complex integrity before and after ovulation: plasminogen activator synthesis and matrix degradation. Endocrinology 2001; 142: 3033-40.
  32. Oktay K, Turkcuoglu I, Rodriguez-Wallberg K.A. GnRH agonist trigger for women with breast cancer undergoing fertility preservation by aromatase inhibitor/FSH stimulation. Reprod Biomed Online 2010; 20: 783-8.
  33. Humaidan P, Bredkjaer H.E, Bungum L et al. GnRH agonist(buserelin) or HCG for ovulation induction in GnRHnantagonist IVF/ICSI cycles: a prospective randomized study. Hum Reprod 2005; 20: 1213-20.
  34. Fauser B.C, de Jong D, Olivennes F et al. Endocrine profiles after triggering of final oocyte maturation with GnRH agonist after cotreatment with the GnRH antagonist ganirelix during ovarian hyperstimulation for in vitro fertilization. J Clin Endocrinol Metab 2002; 87: 709-15.
  35. Kolibianakis E.M, Schultze-Mosgau A, Schroer A et al. A lower ongoing pregnancy rate can be expected when GnRH agonist is used for triggering final oocyte maturation instead of HCG in patients undergoing IVF with GnRH antagonists. Hum Reprod 2005; 20: 2887-92.
  36. Galindo A, Bodri D, Jose Guillen J et al. Triggering with HCG or GnRH agonist in GnRH antagonist treated oocyte donation cycles: a randomised clinical trial. Gynecol Endocrinol 2009; 25: 60-6.
  37. Melo M, Busso C.E, Bellver J et al. GnRH agonist versus recombinant HCG in an oocyte donation programme: a randomized, prospective, controlled, assessorblind study. Reprod Biomed Online 2009; 19: 486-92.
  38. Pirard C, Donnez J, Loumaye E. GnRH agonist as luteal phase support in assisted reproduction technique cycles: results of a pilot study. Hum Reprod 2006; 21: 1894-900.
  39. Casper R.F, Yen S.S. Induction of luteolysis in the human with a long - acting analog of luteinizing hormone - releasing factor. Science 1979; 205: 408-10.
  40. Sugino N, Kaskida S, Takiguchi S et al. Expression of vascular endothelial growth factor and its receptors in the human corpus luteum during the menstrual cycle and in early pregnancy. J Clin Endocrinol 2000; 85: 3919-24.
  41. Wang T.H, Horng S.G, Chang C.L et al. Human chorionic gonadotropin - induced hyperstimulation syndrome is associated with up - regulation of vascular endothelial growth factor. J Clin Endocrinol Metab 2002; 87: 3300-8.
  42. Robinson R.S, Nicklin L.T, Hammond A.J et al. Fibroblast growth factor 2 is more dynamic than vascular endothelial growth factor A during the follicle - luteal transition in the cow. Biol Reprod 2007; 77: 28-36.
  43. Berisha B, Steffl M, Amselgruber W, Schams D. Changes in fibroblast growth factor 2 and its receptors in bovine follicles before and after GnRH application and after ovulation. Reproduction 2006; 131: 319-29.
  44. Licht P, Russu V, Wildt L. On the role of human chorionic gonadotropin (hCG) in the embryo - endometrial microenvironment: implications for differentiation and implantation. Semin Reprod Med 2001; 19: 37-47.
  45. Rao C.V. Multiple novel roles of luteinizing hormone. Fertil Steril 2001; 76: 1097-100.
  46. Humaidan P. Luteal phase rescue in high - risk OHSS patients by GnRHa triggering in combination with low - dose HCG: a pilot study. Reprod Biomed Online 2009; 18: 630-4.
  47. Humaidan P, Ejdrup Bredkjaer H, Westergaard L.G, Yding Andersen C. 1500 IU human chorionic gonadotropin administered at oocyte retrieval rescues the luteal phase when gonadotropin - releasing hormone agonist is used for ovulation induction: a prospective, randomized, controlled study. Fertil Steril 2010; 93: 847-54.
  48. Shapiro B.S, Daneshmand S.T, Garner F.C et al. Gonadotropin - releasing hormone agonist combined with a reduced dose of human chorionic gonadotropin for final oocyte maturation in fresh autologous cycles of in vitro fertilization. Fertil Steril 2008; 90: 231-3.
  49. Yamoto M, Minami S, Nakano R. Immunohistochemical localization of inhibin subunits in human corpora lutea during menstrual cycle and pregnancy. J Clin Endocrinol Metab 1991; 73: 470-7.
  50. Treetampinich C, O’Connor A.E, Mac Lachlan V et al. Maternal serum inhibin A concentrations in early pregnancy after IVF and embryo transfer reflect the corpus luteum contribution and pregnancy outcome. Hum Reprod 2000; 15: 2028-32.
  51. Muttukrishna S, Child T.J, Groome N.P, Ledger W.L. Source of circulating levels of inhibin A, pro alpha C-containing inhibins and activin A in early pregnancy. Hum Reprod 1997; 12: 1089-93.
  52. Nevo O, Eldar-Geva T, Kol S, Itskovitz-Eldor J. Lower levels of inhibin A and pro - alphaC during the luteal phase after triggering oocyte maturation with a gonadotropin - releasing hormone agonist versus human chorionic gonadotropin. Fertil Steril 2003; 79: 1123-8.
  53. Devroey P, Polynoz N.P, Blockeel C. An OHSS-Free Clinic by segmentation of IVF treatment. Hum Reprod 2011; 26: 2593-7.
  54. Humaidan P, Bungum L, Bungum M, Yding Andersen C. Rescue of corpus luteum function with peri - ovulatory HCG supplementation in IVF/ICSI GnRH antagonist cycles in which ovulation was triggered with a GnRH agonist: a pilot study. Reprod Biomed Online 2006; 13: 173-8.
  55. Humaidan P. Luteal phase rescue in high - risk OHSS patients by GnRHa triggering in combination with low - dose HCG: a pilot study. Reprod Biomed Online 2009; 18: 630-4.
  56. Humaidan P, Polyzos N.P, Alsbjerg B et al. GnRHa trigger and individualized luteal phase hCG support according to ovarian response to stimulation: two prospective randomized controlled multi - centre studies in IVF patients. Hum Reprod 2013; 28 (9): 2511-21.
  57. Youssef M.A, van der Veen F, Al-Inany H.G et al. Gonadotropin - releasing hormone agonist versus HCG for oocyte triggering in antagonist - assisted reproductive technology. Cochrane Database Syst Rev 2014; 10.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML
下载

版权所有 © Consilium Medicum, 2016

Creative Commons License
此作品已接受知识共享署名-非商业性使用-相同方式共享 4.0国际许可协议的许可。

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».