Дифференциальная диагностика доброкачественных опухолей и злокачественных новообразований яичников на основании метаболома крови
- Авторы: Юрова М.В.1, Токарева А.О.1, Чаговец В.В.1, Стародубцева Н.Л.1, Франкевич В.Е.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
- Выпуск: Том 26, № 3 (2024)
- Страницы: 229-236
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/2079-5831/article/view/265189
- DOI: https://doi.org/10.26442/20795696.2024.3.202941
- ID: 265189
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Высокий уровень смертности от рака яичников во многом обусловлен бессимптомным течением заболевания. Признаки злокачественных и пограничных опухолей яичника схожи с проявлениями доброкачественных поражений, что определяет актуальность разработки дополнительных процедур обследования и поиска новых онкомаркеров, которые позволят различать доброкачественные и злокачественные процессы.
Цель. Создать устойчивые панели липидов крови для дифференциации здоровых пациентов, пациентов с доброкачественными (ДОЯ) и злокачественными (ЗОЯ) опухолями яичника.
Материалы и методы. Выполнен поиск маркеров для кластеризации молекулярных профилей образцов крови пациентов ФГБУ «НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова» с ДОЯ (цистаденома – n=30, эндометриоидная киста – n=56, тератома – n=21), с ЗОЯ (пограничная опухоль – n=28, рак яичников низкой степени злокачественности – n=16, рак яичников высокой степени злокачественности – n=59) и добровольцев группы контроля (n=19) при помощи дискриминантного анализа ортогональных проекций на скрытые структуры с установленным порогом важности переменной VIP>1 (OPLS) и метода проекций на скрытые структуры (PLS-PLS – это технология многомерного статистического анализа, используемая для сокращения размерности пространства признаков с минимальной потерей полезной информации; порог важности VIP>1) и других статистических инструментов. Молекулярный профиль образцов составляли соединения, идентифицированные посредством методов ядерного магнитного резонанса и высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрией. Проведен анализ вовлеченности соединений, являющихся потенциальными маркерами злокачественных процессов, в метаболические пути.
Результаты. На основе методов OPLS и PLS в результате попарного и мультиклассового сравнений соответственно выявлены наборы липидов, которые могут рассматриваться в качестве маркеров злокачественных и доброкачественных новообразований. Изучено перекрытие полученных панелей с базами данных метаболических путей, в частности показано, что все маркеры (кроме глюкозы), полученные посредством PLS для дифференциации здоровых пациентов, пациентов с ДОЯ или с ЗОЯ, задействованы в пути транспорта малых молекул (Transport of small molecules), глюкоза и лактат участвуют в пути TCA Cycle Nutrient Utilization and Invasiveness of Ovarian Cancer. Триглицериды TG 16:0_16:0_18:1, TG 16:0_18:0_18:1, TG 16:0_18:1_18:1, TG 18:0_18:1_18:1, TG 18:0_18:1_18:2 и лактат вовлечены в путь HIF1A and PPARG regulation of glycolysis, причем гены HIF1A и PPARG связаны с развитием опухолей. Метаболиты CE 20:4, TG 16:0_16:0_18:1, TG 16:0_18:0_18:1, TG 16:0_18:1_18:1, TG 18:0_18:1_18:1, TG 18:0_18:1_18:2 включены в пути энергетического обмена, а LPC 16:0, PC 16:0_20:3, PC 16:0_20:4 вовлечены в путь Choline metabolism in cancer. Построены графы корреляционного взаимодействия маркеров, позволяющих решать задачи классификации с однозначной интерпретацией результатов, что дает возможность говорить о перспективности использования данных панелей для дальнейшего создания классификационных моделей.
Заключение. Показано, что липиды из разработанных панелей участвуют в метаболических путях, связанных с развитием опухолевых заболеваний, и могут быть использованы для дальнейшей валидации диагностических моделей на основе методов углубленного машинного обучения. Внедрение достижений постгеномных исследований обладает потенциалом повысить диагностическую ценность применяемых методов дифференцировки доброкачественных и злокачественных пролиферативных процессов, а также дополнить имеющиеся данные о процессах канцерогенеза в яичниках. Таким образом, анализ молекулярного профиля крови посредством масс-спектрометрии является малоинвазивным потенциально эффективным методом диагностики.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Мария Владимировна Юрова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: m_yurova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-0179-7635
канд. мед. наук, врач – акушер-гинеколог, онколог, науч. сотр. научно-поликлинического отд-ния
Россия, МоскваАлиса Олеговна Токарева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: alisa.tokareva@phystech.edu
ORCID iD: 0000-0001-5918-9045
канд. физ.-мат. наук, специалист лаб. клинической протеомики
Россия, МоскваВиталий Викторович Чаговец
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: vvchagovets@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5120-376X
канд. физ.-мат. наук, зав. лаб. метаболомики и биоинформатики
Россия, МоскваНаталия Леонидовна Стародубцева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: n_starodubtseva@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0001-6650-5915
канд. биол. наук, зав. лаб. клинической протеомики
Россия, МоскваВладимир Евгеньевич Франкевич
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: v_vfrankevich@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-9780-4579
д-р физ.-мат. наук, зам. дир. Института трансляционной медицины
Россия, МоскваСписок литературы
- Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году. М. 2020 [Kaprin AD, Starinskii VV, Shakhzadova A.O. Sostoianiie onkologicheskoi pomoshchi naseleniyu Rossii v 2019 godu. Moscow. 2020 (in Russian)].
- Warren LA, Shih A, Renteira SM, et al. Analysis of menstrual effluent: diagnostic potential for endometriosis. Mol Med. 2018;24(1):1-12. doi: 10.1186/s10020-018-0009-6.
- Gaul DA, Mezencev R, Long TG, et al. Highly-accurate metabolomic detection of early-stage ovarian cancer. Sci Rep. 2015;5:1-7.
- Grossman DC, Curry SJ, Owens DK, et al. Screening for ovarian cancer US preventive services task force recommendation statement. JAMA. 2018;319(6):588-94.
- Xie WT, Wang YQ, Xiang ZS, et al. Efficacy of IOTA simple rules, O-RADS, and CA125 to distinguish benign and malignant adnexal masses. J Ovarian Res. 2022;15(1):15. doi: 10.1186/s13048-022-00947-9
- Xun L, Zhai L, Xu H. Comparison of conventional, doppler and contrast-enhanced ultrasonography in differential diagnosis of ovarian masses: a systematic review and meta-analysis. BMJ Open. 2021;11:e052830. doi: 10.1136/bmjopen-2021-052830
- Cui L, Xu H, Zhang Y. Diagnostic Accuracies of the Ultrasound and Magnetic Resonance Imaging ADNEX Scoring Systems For Ovarian Adnexal Mass: Systematic Review and Meta-Analysis. Acad Radiol. 2022;29(6):897-908. doi: 10.1016/j.acra.2021.05.029
- Eroglu EC, Kucukgoz Gulec U, Vardar MA, Paydas S. GC-MS based metabolite fingerprinting of serous ovarian carcinoma and benign ovarian tumor. Eur J Mass Spectrom (Chichester). 2022;28(1-2):12-24. doi: 10.1177/14690667221098520
- Kim H, Won BH, Choi JI, et al. BRAK and APRIL as novel biomarkers for ovarian tumors. Biomark Med. 2022;16(9):717-29. doi: 10.2217/bmm-2021-1014
- Zhang W, Lai Z, Liang X, et al. Metabolomic biomarkers for benign conditions and malignant ovarian cancer: Advancing early diagnosis. Clin Chim Acta. 2024;560:119734. doi: 10.1016/j.cca.2024.119734
- Ban D, Housley SN, Matyunina LV, et al. A personalized probabilistic approach to ovarian cancer diagnostics. Gynecol Oncol. 2024;182:168-75. doi: 10.1016/j.ygyno.2023.12.030
- Nunes SC, Sousa J, Silva F, et al. Peripheral Blood Serum NMR Metabolomics Is a Powerful Tool to Discriminate Benign and Malignant Ovarian Tumors. Metabolites. 2023;13(9):989. doi: 10.3390/metabo13090989
- Shekher A, Puneet, Awasthee N, et al. Association of altered metabolic profiles and long non-coding RNAs expression with disease severity in breast cancer patients: analysis by 1H NMR spectroscopy and RT-q-PCR. Metabolomics. 2023;19(2):8. doi: 10.1007/s11306-023-01972-5
- Чаговец В.В., Васильев В.Г., Юрова М.В., и др. Метаболомная подпись свободных муцинов при онкологических заболеваниях: CA125 и рак яичников высокой степени злокачественности. Вестник РГМУ. 2021;(6):10-6 [Chagovets VV, Vasil'ev VG, Iurova MV, et al. Metabolic “footprints” of the circulating cancer mucins: CA125 in the high-grade ovarian cancer. Bulletin of RSMU. 2021;(6):10-6 (in Russian)]. doi: 10.24075/vrgmu.2021.065.
- Sah S, Bifarin OO, Moore SG, et al. Serum Lipidome Profiling Reveals a Distinct Signature of Ovarian Cancer in Korean Women. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2024;33(5):681-93. doi: 10.1158/1055-9965.EPI-23-1293
- Saorin A, Di Gregorio E, Miolo G, et al. Emerging role of metabolomics in ovarian cancer diagnosis. Metabolites. 2020;10:419.
- Butler LM, Perone Y, Dehairs J, et al. Lipids and cancer: emerging roles in pathogenesis, diagnosis and therapeutic intervention. Adv Drug Deliv Rev. 2020;159:245-93.
- Niemi RJ, Braicu EI, Kulbe H, et al. Ovarian tumours of different histologic type and clinical stage induce similar changes in lipid metabolism. Br J Cancer. 2018;119:847-54.
- Li J, Xie H, Li A, et al. Distinct plasma lipids profiles of recurrent ovarian cancer by liquid chromatography-mass spectrometry. Oncotarget. 2017;8:46834-45.
- Onwuka JU, Okekunle AP, Olutola OM, et al. Lipid profile and risk of ovarian tumours: a meta-analysis. BMC Cancer. 2020;20:200.
- Braicu EI, Darb-Esfahani S, Schmitt WD, et al. High-grade ovarian serous carcinoma patients exhibit profound alterations in lipid metabolism. Oncotarget. 2017;8:102912-22.
- Buas MF, Drescher CW, Urban N, et al. Quantitative global lipidomics analysis of patients with ovarian cancer versus benign adnexal mass. Sci Rep. 2021;11:18156.
- Galan A, Papaluca A, Nejatie A, et al. GD2 and GD3 gangliosides as diagnostic biomarkers for all stages and subtypes of epithelial ovarian cancer. Front Oncol. 2023;13:1134763.
- Iurova MV, Chagovets VV, Pavlovich SV, et al. Lipid Alterations in Early-Stage High-Grade Serous Ovarian Cancer. Front Mol Biosci. 2022;9:770983. doi: 10.3389/fmolb.2022.770983
- Юрова М.В., Чаговец В.В., Франкевич В.Е., и др. Дифференциация серозных новообразований яичников на основании масс-спектрометрического анализа липидного профиля сыворотки крови: пилотное исследование. Акушерство и гинекология. 2021;(9):107-19 [Iurova MV, Chagovets VV, Frankevich VE, et al. Differential diagnosis of serous ovarian tumors using mass spectrometry-based serum lipid profiling: A pilot study. Akusherstvo i Ginekologiia. 2021;(9):107-19 (in Russian)]. doi: 10.18565/aig.2021.9.107-119
- Юрова М.В., Франкевич В.Е., Павлович С.В., и др. Диагностика серозного рака яичников высокой степени злокачественности Iа–Iс стадии по липидному профилю сыворотки крови. Гинекология. 2021;23(4):335-40 [Iurova MV, Frankevich VE, Pavlovich SV, et al. Diagnosis of Ia–Ic stages of serous high-grade ovarian cancerby the lipid profile of blood serum. Gynecology. 2021;23(4):335-40 (in Russian)]. doi: 10.26442/20795696.2021.4.200911
- Bowman FD, Guo Y, Derado G. Statistical approaches to functional neuroimaging data. Neuroimaging Clin N Am. 2007;17(4):441-58. doi: 10.1016/j.nic.2007.09.002
Дополнительные файлы
