In vitro maturation в рамках сохранения фертильности при онкологической патологии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Согласно статистике Всемирной организации здравоохранения ежегодно увеличивается число пациентов репродуктивного возраста, которые сталкиваются с онкологическими заболеваниями. В связи с этим улучшение качества жизни данной категории больных является одной из приоритетных задач медицинского сообщества. Известно, что более 30% женщин, столкнувшихся с онкологией, на момент заболевания еще не реализовали свою репродуктивную функцию. Поэтому одним из ведущих направлений в медицине является разработка и усовершенствование методов сохранения репродуктивной функции. Созревание ооцитов in vitro – одна из перспективных методик, реализуемых в рамках онкофертильности, которая используется в качестве альтернативы традиционных циклов стимуляции овуляции, с последующим получением зрелых ооцитов. Цель данного обзора состоит в изучении процедуры in vitro maturation, анализе данных мировой литературы относительно ее эффективности и безопасности при использовании данной методики в программах по сохранению репродуктивного материала у пациенток с онкологическими заболеваниями.

Об авторах

Юлия Эдуардовна Доброхотова

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: Pr.Dobrohotova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7830-2290

доктор медицинских наук, профессор, , зав. каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Ирина Александровна Лапина

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: doclapina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2875-6307

доктор медицинских наук, доц. каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Анастасия Александровна Малахова

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: anastasimed@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2140-8000

аспирант каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Татьяна Геннадьевна Чирвон

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: tkoltinova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8302-7510

аспирант каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Владислав Витальевич Таранов

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: vlastaranov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2338-2884

аспирант каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Юрий Александрович Сорокин

АО ГК «МЕДСИ» Клинико-диагностический центр на Солянке

Email: sorokin_y@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9305-323X

Руководитель Центра репродуктивного здоровья

Россия, Москва

Мария Анатольевна Твердикова

АО ГК «МЕДСИ» Клинико-диагностический центр на Солянке

Email: doclapina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0462-2838

зав. отделением экстракорпорального оплодотворения

Россия, Москва

Валерия Михайловна Гомзикова

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: gomaval1402@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6297-8811

аспирант каф. акушерства и гинекологии

Россия, Москва

Анастасия Андреевна Затеева

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: doclapina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0189-0845

аспирант каф. акушерства и гинекологии лечебного факультета

Россия, Москва

Олеся Владимировна Кайкова

АО ГК «МЕДСИ» Клиническая больница №2 в Боткинском проезде

Email: kajkova.ov@medsigroup.ru

зав. гинекологическим отделением

Россия, Москва

Список литературы

  1. Назаренко Т.А., Ашрафян Л.А., Джанашвили Л.Г., Мартиросян Я.О. Сохранение репродуктивного материала у онкологических больных как медико-социальная и организационная проблема. Онкология. Журнал имени П.А. Герцена. 2020;9(1):60-5 [Nazarenko TA, Ashrafian LA, Dzhanashvili LG, Martirosyan YO. Retention of reproductive material in cancer patients as a sociomedical and organizational problem. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2020;9(1):60-5 (in Russian)].
  2. Chian RC, Uzelac PS, Nargund G. In vitro maturation of human immature oocytes for fertility preservation. Fertil Steril. 2013;99(5):1173-81.
  3. Буняева Е.С., Кириллова А.О., Назаренко Т.А., и др. Показания и эффективность технологии получения незрелых ооцит-кумулюсных комплексов из ткани яичника с последующим их дозреванием in vitro. Акушерство и гинекология. 2022;6:75-82 [Buniaieva YeS, Kirillova AO, Nazarenko TA, et al. Pokazaniia i effektivnost' tekhnologii polucheniia nezrelykh ootsit-kumuliusnykh kompleksov iz tkani iaichnika s posleduiushchim ikh dozrevaniiem in vitro. Akusherstvo i ginekologiia. 2022;6:75-82 (in Russian)].
  4. Yasmin E, Balachandren N, Davies MC, et al. British Fertility Society Fertility preservation for medical reasons in girls and women: British fertility society policy and practice guideline. Hum Fertil. 2018;21(1):3-26.
  5. Harada M, Osuga Y. Fertility preservation for female cancer patients. Japan Soc Clin Oncol. 2018;24(1):28-33.
  6. Dolmans MM, Manavella DD. Recent advances in fertility preservation. J Obstet Gynaecol Res. 2019;45(2):266-79.
  7. Wallace WH, Anderson EA, Irvine DS. Fertility preservation for young patients with cancer: Who is at risk and what can be offered? Lancet Oncol. 2005;6:209-18.
  8. Kato K. Vitrification of embryos and oocytes for fertility preservation in cancer patients. Reprod Med Biol. 2016;15(4):227-33.
  9. Donnez J, Dolmans MM. Fertility preservation in women. N Engl J Med. 2017;377:1657-65.
  10. Hart RJ. Optimizing the opportunity for female fertility preservation in a limited time-frame for patients with cancer using in vitro maturation and ovarian tissue cryopreservation. Fertil Steril. 2019;111(2):258-9.
  11. Loren AW, Mangu PB, Beck LN, et al. Fertility preservation for patients with cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 2013;31:2500-10
  12. Dinas KD. Fertility Counseling and Preservation for Breast Cancer Patient. Adv Exp Med Biol. 2020;1252:181-7.
  13. Creux H, Monnier P, Son WY, et al. Immature oocyte retrieval and in vitro oocyte maturation at different phases of the menstrual cycle in women with cancer who require urgent gonadotoxic treatment. Fertil Steril. 2017;107(1):198-204.
  14. ESHRE guideline: female fertility preservation. Hum Reprod Open. 2020;2020(4):hoaa052.
  15. Gong X, Li H, Zhao Y. The Improvement and Clinical Application of Human Oocyte In Vitro Maturation (IVM). Reprod Sci. 2022;29(8):2127-35.
  16. Hatırnaz Ş, Ata B, Hatırnaz ES, et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turk J Obstet Gynecol. 2018;15(2):112-5.
  17. Pincus GB. Unfertilized human tubal ova. Anat Rec. 1937;69:163-9.
  18. Rock J, Menkin MF. In vitro fertilization and cleavage of human ovarian eggs. Science. 1946;100:105-7.
  19. De Roo C, Tilleman K. In Vitro Maturation of Oocytes Retrieved from Ovarian Tissue: Outcomes from Current Approaches and Future Perspectives. J Clin Med. 2021;10(20):4680.
  20. De Vos M, Grynberg M, Tuong MH, et al. Perspectives on the development and future of oocyte IVM in clinical practice. J Assist Reprod Genet. 2021;38(6):1265-80.
  21. Edwards RG. Maturation in vitro of human ovarian oocytes. Lancet. 1965;2:926-9.
  22. Herta AC, Lolicato F, Smitz JEJ. In vitro follicle culture in the context of IVF. Reproduction. 2018;156:59-73.
  23. Элленбоген А., Шалом-пац Е., Аншина М.Б., Смирнова А.А. Дозревание ооцитов in vitro. Показания, техника и результаты. Проблемы репродукции. 2015;1:32-40 [Ellenbogen A, Shalom-paz E, Anshina MB, Smirnova AA. In Vitro Matitration of oocytes. Indication, technique and results. Russian Journal of Human Reproduction. 2015;21(1):32-40. (in Russian)].
  24. Plancha CE, Rodrigues P, Marques M, et al. The time is ripe for oocyte in vitro maturation. J Assist Reprod Genet. 2021;38:1281-3.
  25. Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021;115(2):298-304.
  26. Shirasawa H, Terad Y. In vitro maturation of human immature oocytes for fertility preservation and research material. Reprod Med Biol. 2017;16:258-67.
  27. Son WY, Henderson S, Cohen Y, et al. Immature Oocyte for Fertility Preservation. Front Endocrinol (Lausanne). 2019;10:464.
  28. Yang ZY, Chian RC. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertil Steril. 2017;108(4):577-84.
  29. Walls ML, Hart R. In Vitro Maturation. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2018;53:60-72.
  30. Junk SM, Yeap D. Improved implantation and ongoing pregnancy rates after single-embryo transfer with an optimized protocol for in vitro oocyte maturation in women with polycystic ovaries and polycystic ovary syndrome. Fertil Steril. 2012;98(4):888-92.
  31. Gilchrist R.B, Luciano AM, Richani D, et al. Oocyte maturation and quality: Role of cyclic nucleotides. Reproduction. 2016;152:143-57.
  32. Sánchez F, Lolicato F, Romero S, et al. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum Reprod. 2017;32:2056-68.
  33. Hourvitz A, Yerushalmi GM, Maman E, et al. Combination of ovarian tissue harvesting and immature oocyte collection for fertility preservation increases preservation yield. Reprod Biomed Online. 2015;31:497-505.
  34. Creux H, Monnier P, Son WY, Buckett W. Thirteen years’ experience in fertility preservation for cancer patients after in vitro fertilization and in vitro maturation treatments. J Assist Reprod Genet. 2018;35:583-92
  35. Shapira M, Raanani H, Meirow D, IVF for fertility preservation in breast cancer patients-efficacy and safety issues. J Assist Reprod Genet. 2015;32:1171-8.
  36. Abir R, Ben-Aharon I, Garor R, et al. Cryopreservation of in vitro matured oocytes in addition to ovarian tissue freezing for fertility preservation in pediatric female cancer patients before and after cancer therapy. Hum Reprod. 2016;31:750-62.
  37. Azem F, Hasson J, Ben-Yosef D, et al. Histologic evaluation of fresh human ovarian tissue before cryopreservation. Int J Gynecol Pathol. 2010;29:19-23.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Ооциты, полученные на разных стадиях развития: a, b – незрелый ооцит на стадии незрелого пузырька (GV); c, d – ооцит, дозревший до стадии M II.

Скачать (174KB)
Метаданные
3. Рис. 2: a – монофазная IVM (из GV до MII без промежуточной среды); b – двухфазная IVM (остановка в среде на этапе GV, затем помещение в среду IVM).

Скачать (56KB)
Метаданные

© ООО "Консилиум Медикум", 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».