Иммуноморфологическая оценка изменений функциональных белков астроглии на индуцированной каинатом модели склероза гиппокампа
- Авторы: Воронков Д.Н.1, Егорова А.В.1,2, Федорова Е.Н.1,2, Ставровская А.В.1, Потапов И.А.1, Павлова А.К.1, Сухоруков В.С.1,2
-
Учреждения:
- Научный центр неврологии
- Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
- Выпуск: Том 18, № 2 (2024)
- Страницы: 34-44
- Раздел: Оригинальные статьи
- URL: https://ogarev-online.ru/2075-5473/article/view/262419
- DOI: https://doi.org/10.17816/ACEN.1102
- ID: 262419
Цитировать
Аннотация
Введение. Участие астроцитов в медиаторном обмене, нейропластичности, энергетической поддержке нейронов и нейровоспалении определяет их патогенетическую роль при эпилепсии.
Цель исследования — оценка регионально-специфических изменений распределения функциональных белков астроглии в реактивных астроцитах при каинат-индуцированной модели мезиальной эпилепсии височной доли.
Материалы и методы. Иммунофлуоресцентным методом оценивали локализацию и экспрессию функциональных белков астроглии: аквапорина-4, коннексина-43, EAAT1/2 и глутаминсинтетазы в поле CA3 гиппокампа, зубчатой извилине, слое stratum lucidum у животных через 28 сут после интрагиппокампального введения каиновой кислоты.
Результаты. Выявленные изменения носили неоднородный характер в исследованных субрегионах гиппокампа. Астроциты stratum lucidum, ассоциированные с мшистыми волокнами, демонстрировали наибольшую уязвимость и снижение содержания и/или нарушение локализации каналов и транспортёров, формирующих мембранные комплексы в отростках. Нарушение гомеостатических функций астроцитов отягощает патологический процесс как на стороне введения токсина, так и в противоположном гиппокампе.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дмитрий Николаевич Воронков
Научный центр неврологии
Автор, ответственный за переписку.
Email: voronkov@neurology.ru
ORCID iD: 0000-0001-5222-5322
к.м.н., с.н.с. лаб. нейроморфологии Института мозга Научного центра неврологии
Россия, МоскваАнна Валериевна Егорова
Научный центр неврологии; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
Email: av_egorova@bk.ru
ORCID iD: 0000-0001-7112-2556
к.м.н., н.с. лаб. нейроморфологии Института мозга Научного центра неврологии; доцент каф. гистологии, эмбриологии и цитологии РНИМУ им. Н.И. Пирогова
Россия, Москва; МоскваЕвгения Николаевна Федорова
Научный центр неврологии; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
Email: ewgenia.feodorowa2011@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2128-9056
лаборант-исследователь лаб. нейроморфологии Института мозга Научного центра неврологии; ассистент каф. гистологии, эмбриологии и цитологии РНИМУ им. Н.И. Пирогова
Россия, Москва; МоскваАлла Вадимовна Ставровская
Научный центр неврологии
Email: stavrovskaya.al@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8689-0934
к.б.н., зав. лаб. экспериментальной патологии нервной системы и нейрофармакологии Института мозга Научного центра неврологии
Россия, МоскваИван Александрович Потапов
Научный центр неврологии
Email: potapov.i.a@neurology.ru
ORCID iD: 0000-0002-7471-3738
м.н.с. лаб. экспериментальной патологии нервной системы и нейрофармакологии Института мозга Научного центра неврологии
Россия, МоскваАнастасия Кирилловна Павлова
Научный центр неврологии
Email: pav_nastasya@mail.ru
ORCID iD: 0009-0006-5653-5524
лаборант-исследователь лаб. экспериментальной патологии нервной системы и нейрофармакологии Института мозга Научного центра неврологии
Россия, МоскваВладимир Сергеевич Сухоруков
Научный центр неврологии; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
Email: sukhorukov@neurology.ru
ORCID iD: 0000-0002-0552-6939
д.м.н., зав. лаб. нейроморфологии Института мозга Научного центра неврологии; профессор каф. гистологии, эмбриологии и цитологии РНИМУ им. Н.И. Пирогова
Россия, Москва; МоскваСписок литературы
- Janmohamed M., Brodie M.J., Kwan P. Pharmacoresistance — epidemio- logy, mechanisms, and impact on epilepsy treatment. Neuropharmacology. 2020;168:107790. doi: 10.1016/j.neuropharm.2019.107790
- Sumadewi K.T., Harkitasari S., Tjandra D.C. Biomolecular mechanisms of epileptic seizures and epilepsy: a review. Acta Epileptol. 2023;5(28). doi: 10.1186/s42494-023-00137-0
- Копачев Д.Н., Шишкина Л.В., Быченко В.Г. и др. Склероз гиппокампа: патогенез, клиника, диагностика, лечение. Вопросы нейрохирургии им. Н.Н. Бурденко. 2016;80(4):109–116. doi: 10.17116/neiro2016804109-116
- Blümcke I., Thom M., Aronica E. et al. International consensus classification of hippocampal sclerosis in temporal lobe epilepsy: a Task Force report from the ILAE Commission on Diagnostic Methods. Epilepsia. 2013;54(7):1315–1329. doi: 10.1111/epi.12220.
- Tai X.Y., Bernhardt B., Thom M. et al. Review: neurodegenerative processes in temporal lobe epilepsy with hippocampal sclerosis: clinical, pathological and neuroimaging evidence. Neuropathol. Appl. Neurobiol. 2018;44(1):70–90. doi: 10.1111/nan.12458
- Verkhratsky A., Parpura V., Vardjan N., Zorec R. Physiology of astroglia. Adv. Exp. Med. Biol. 2019;1175:45–91. doi: 10.1007/978-981-13-9913-8_3
- Binder D.K., Steinhäuser C. Astrocytes and epilepsy. Neurochem. Res. 2021;46(10):2687–2695. doi: 10.1007/s11064-021-03236-x
- Johnson A.M., Sugo E., Barreto D. et al. The severity of gliosis in hippocampal sclerosis correlates with pre-operative seizure burden and outcome after temporal lobectomy. Mol. Neurobiol. 2016;53(8):5446–5456. doi: 10.1007/s12035-015-9465-y
- Grote A., Heiland D.H., Taube J. et al. 'Hippocampal innate inflammatory gliosis only' in pharmacoresistant temporal lobe epilepsy. Brain. 2023;146(2):549–560. doi: 10.1093/brain/awac293
- Twible C., Abdo R., Zhang Q. Astrocyte role in temporal lobe epilepsy and development of mossy fiber sprouting. Front. Cell Neurosci. 2021;15:725693. doi: 10.3389/fncel.2021.725693
- Falcón-Moya R., Sihra T.S., Rodríguez-Moreno A. Kainate receptors: role in epilepsy. Front. Mol. Neurosci. 2018;11:217. doi: 10.3389/fnmol.2018.00217
- Горина Я.В., Салмина А.Б., Ерофеев А.И. и др. Маркеры активации астроцитов. Биохимия. 2022;87(7):975-998. doi: 10.31857/S0320972522070119
- Huang X., Su Y., Wang N. et al. Astroglial connexins in neurodegenerative diseases. Front. Mol. Neurosci. 2021;14:657514. doi: 10.3389/fnmol.2021.657514
- Хаспеков Л.Г., Фрумкина Л.Е. Молекулярные механизмы, опосредующие участие глиальных клеток в пластических перестройках головного мозга при эпилепсии обзор. Биохимия. 2017;82(3):528–541.
- Viana J.F., Machado J.L., Abreu D.S. et al. Astrocyte structural heterogeneity in the mouse hippocampus. Glia. 2023;71(7):1667–1682. doi: 10.1002/glia.24362
- Prabhakar P., Pielot R., Landgraf P. et al. Monitoring regional astrocyte diversity by cell type-specific proteomic labeling in vivo. Glia. 2023;71(3):682–703. doi: 10.1002/glia.24304
- Makarava N., Mychko O., Molesworth K. et al. Region-specific homeosta- tic identity of astrocytes is essential for defining their response to pathological insults. Cells. 2023;12(17):2172. doi: 10.3390/cells12172172
- Batiuk M.Y., Martirosyan A., Wahis J. et al. Identification of region-specific astrocyte subtypes at single cell resolution. Nat. Commun. 2020;11(1):1220. doi: 10.1038/s41467-019-14198-8
- Su Y., Zhou Y., Bennett M.L. et al. A single-cell transcriptome atlas of glial diversity in the human hippocampus across the postnatal lifespan. Cell Stem. Cell. 2022;29(11):1594.e8–1610.e8. Erratum in: Cell Stem. Cell. 2023;30(1):113. doi: 10.1016/j.stem.2022.09.010
- Cibelli A., Stout R., Timmermann A. et al. Cx43 carboxyl terminal domain determines AQP4 and Cx30 endfoot organization and blood brain barrier permeability. Sci. Rep. 2021;11(1):24334. doi: 10.1038/s41598-021-03694-x
- Зиматкин С.М., Климуть Т.В., Заерко А.В. Структурная организация формации гиппокампа крысы. Сибирский научный медицинский журнал. 2023;43(3):4–14. doi: 10.18699/SSMJ20230301
- Воронков Д.Н., Ставровская А.В., Потапов И.А. и др. Глиальная реакция на нейровоспалительной модели болезни Паркинсона. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2022;174(11):658–664. doi: 10.47056/0365-9615-2022-174-11-658-664
- Aguilar-Arredondo A., López-Hernández F., García-Velázquez L. et al. Behavior-associated neuronal activation after kainic acid-induced hippocampal neurotoxicity is modulated in time. Anat. Rec. (Hoboken). 2017;300(2):425–432. doi: 10.1002/ar.23513
- Bond A.M., Berg D.A., Lee S. et al. Differential timing and coordination of neurogenesis and astrogenesis in developing mouse hippocampal subregions. Brain Sci. 2020;10(12):909. doi: 10.3390/brainsci10120909
- Khakh B.S., Deneen B. The emerging nature of astrocyte diversity. Annu. Rev. Neurosci. 2019;42:187–207. doi: 10.1146/annurev-neuro-070918-050443
- Dieni S., Matsumoto T., Dekkers M. et al. BDNF and its pro-peptide are stored in presynaptic dense core vesicles in brain neurons. J. Cell Biol. 2012;196(6):775–788. doi: 10.1083/jcb.201201038
- Fernández-García S., Sancho-Balsells A., Longueville S. et al. Astrocytic BDNF and TrkB regulate severity and neuronal activity in mouse models of temporal lobe epilepsy. Cell Death Dis. 2020;11(6):411. doi: 10.1038/s41419-020-2615-9
- Albini M., Krawczun-Rygmaczewska A., Cesca F. Astrocytes and brain-derived neurotrophic factor (BDNF). Neurosci. Res. 2023;197:42–51. doi: 10.1016/j.neures.2023.02.001
- Hubbard J.A., Szu J.I., Yonan J.M., Binder D.K. Regulation of astrocyte glutamate transporter-1 (GLT1) and aquaporin-4 (AQP4) expression in a model of epilepsy. Exp. Neurol. 2016;283(Pt A):85–96. doi: 10.1016/j.expneurol.2016.05.003
- Lee T.S., Eid T., Mane S. et al. Aquaporin-4 is increased in the sclerotic hippocampus in human temporal lobe epilepsy. Acta Neuropathol. 2004;108(6):493–502. doi: 10.1007/s00401-004-0910-7
- Alvestad S., Hammer J., Hoddevik E.H. et al. Mislocalization of AQP4 precedes chronic seizures in the kainate model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Res. 2013;105(1–2):30–41. doi: 10.1016/j.eplepsyres.2013.01.006
- Szu J.I., Chaturvedi S., Patel D.D., Binder D.K. Aquaporin-4 dysregulation in a controlled cortical impact injury model of posttraumatic epilepsy. Neuroscience. 2020;428:140–153. doi: 10.1016/j.neuroscience.2019.12.006
- Wu N., Lu X.Q., Yan H.T. et al. Aquaporin 4 deficiency modulates morphine pharmacological actions. Neurosci. Lett. 2008;448(2):221–225. doi: 10.1016/j.neulet.2008.10.065
- Lan Y.L., Zou S., Chen J.J. et al. The neuroprotective effect of the association of aquaporin-4/glutamate transporter-1 against Alzheimer's disease. Neural. Plast. 2016;2016:4626593. doi: 10.1155/2016/4626593
- Gebreyesus H.H., Gebremichael T.G. The potential role of astrocytes in Parkinson's disease (PD). Med. Sci. (Basel). 2020;8(1):7. doi: 10.3390/medsci8010007
- Parkin G.M., Udawela M., Gibbons A., Dean B. Glutamate transporters, EAAT1 and EAAT2, are potentially important in the pathophysiology and treatment of schizophrenia and affective disorders. World J. Psychiatry. 2018;8(2):51–63. doi: 10.5498/wjp.v8.i2.51
- Todd A.C., Hardingham G.E. The regulation of astrocytic glutamate transporters in health and neurodegenerative diseases. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(24):9607. doi: 10.3390/ijms21249607
- Bjørnsen L.P., Eid T., Holmseth S. et al. Changes in glial glutamate transporters in human epileptogenic hippocampus: inadequate explanation for high extracellular glutamate during seizures. Neurobiol. Dis. 2007;25(2):319–330. doi: 10.1016/j.nbd.2006.09.014
- Sarac S., Afzal S., Broholm H. et al. Excitatory amino acid transporters EAAT-1 and EAAT-2 in temporal lobe and hippocampus in intractable temporal lobe epilepsy. APMIS. 2009;117(4):291–301. doi: 10.1111/j.1600-0463.2009.02443.x
- Eid T., Lee T.W., Patrylo P., Zaveri H.P. Astrocytes and glutamine synthetase in epileptogenesis. J. Neurosci. Res. 2019;97(11):1345–1362. doi: 10.1002/jnr.24267
- Papageorgiou I.E., Gabriel S., Fetani A.F. et al. Redistribution of astrocytic glutamine synthetase in the hippocampus of chronic epileptic rats. Glia. 2011;59(11):1706–1718. doi: 10.1002/glia.21217
- Hayatdavoudi P., Hosseini M., Hajali V. et al. The role of astrocytes in epileptic disorders. Physiol. Rep. 2022;10(6):e15239. doi: 10.14814/phy2.15239
- Bedner P., Steinhäuser C. Role of impaired astrocyte gap junction coupling in epileptogenesis. Cells. 2023;12(12):1669. doi: 10.3390/cells12121669
- Philippot C., Griemsmann S., Jabs R. et al. Astrocytes and oligodendrocytes in the thalamus jointly maintain synaptic activity by supplying meta- bolites. Cell Rep. 2021;34(3):108642. doi: 10.1016/j.celrep.2020.108642
- Henneberger C. Does rapid and physiological astrocyte-neuron signalling amplify epileptic activity? J. Physiol. 2017;595(6):1917–1927. doi: 10.1113/JP271958
- Deshpande T., Li T., Herde M.K. et al. Subcellular reorganization and altered phosphorylation of the astrocytic gap junction protein connexin43 in human and experimental temporal lobe epilepsy. Glia. 2017;65(11):1809–1820. doi: 10.1002/glia.23196
Дополнительные файлы
