Сравнительная характеристика различных эндотипов хронических риносинуситов

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Хронический риносинусит (ХРС) – это самая частая причина обращения к оториноларингологу. Несмотря на то, что данные по распространенности риносинуситов противоречивы, средний показатель распространенности в мире составил 11,61±5,47% с разбросом от минимального показателя 1,01% до максимального показателя 57,6%. Основываясь на согласительном документе EPOS 2020 (European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyposis), ХРС делят на полипозный и риносинусит без полипов. Особым видом является полипозный риносинусит, который характеризуется низким ответом на консервативную терапию и частые рецидивы после оперативного лечения. Эти серьезные медико-социальные особенности стимулируют на исследование патогенеза формирования носовых полипов. В данном обзоре представлены сведения об иммунологических особенностях и дисфункциях, приводящих к появлению ХРС с полипами или без них. Цель данного обзора – изучить по данным литературы влияние первой линии защиты, компонентов врожденного и приобретенного иммунитета на патогенез полипозного и неполипозного ХРС. В статье представлен обзор зарубежной научной литературы. Авторами был проведен научный поиск по тематике иммунного ответа при формировании ХРС с полипами и без них. Использовали соответствующие ключевые слова и фильтры в поисковых системах PubMed и Google Scholar, по базам данных Scopus, Web of Science, MedLine, The Cochrane Library, EMBASE, Global Health, CyberLeninka. Подробно описано, что все звенья иммунитета не в полном объеме выполняют свои функции. Первой линией защиты слизистой полости носа и пазух является респираторный эпителий и мукоцилиарный клиренс, которые образуют механический барьер к инфекционным и другим проникающим агентам. На следующем этапе в элиминации внешних патогенных агентов принимают участие клетки и система врожденного иммунного ответа, система комплемента. Презентация эпитопа антигена лимфоцитам формирует специализированный адаптивный иммунный ответ. Ремоделирование тканей является одним из наиболее актуальных аспектов патогенеза ХРС. Установлено, что при полипозном риносинусите увеличивается синтез периостина, прогрессирует тканевая эозинофилия, растет выработка цистатина SN, IL-25 и уровень фибробластов, снижается уровень TLR2, TLR4, TGF-β и выработка коллагена, увеличивается внеклеточных нейтрофильных ловушек и уровень М1-макрофагов. Дальнейшее изучение звеньев иммунологического патогенеза ХРС позволит разработать персонифицированный алгоритм диагностики и лечения таких больных.

Об авторах

Анна Михайловна Лазарева

Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера – обособленное подразделение ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр “Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук”»

Автор, ответственный за переписку.
Email: a.m.lazareva88@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7972-3719

к.м.н., младший научный сотрудник

Россия, г. Красноярск

Ольга Валентиновна Смирнова

Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера – обособленное подразделение ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр “Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук”»

Email: ovsmirnova71@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3992-9207

д.м.н., профессор, заведующая лабораторией молекулярно-клеточной патофизиологии

Россия, г. Красноярск

Список литературы

  1. Bae C.H., Na H.G., Choi Y.S., Song S.Y., Kim Y.D. Clusterin Induces MUC5AC Expression via Activation of NF-kappaB in Human Airway Epithelial Cells. Clin. Exp. Otorhinolaryngol., 2018, Vol. 11, no. 2, pp. 124-132.
  2. Boita M., Bucca C., Riva G., Heffler E., Rolla G. Release of type 2 cytokines by epithelial cells of nasal polyps. J. Immunol. Res., 2016, Vol. 2016, 2643297. doi: 10.1155/2016/2643297.
  3. Boscke R., Vladar E.K., Konnecke M., Husing B., Linke R., Pries R., Reiling N., Axelrod J.D., Nayak J.V., Wollenberg B. Wnt Signaling in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Am. J. Respir Cell. Mol. Biol., 2017, Vol. 56, no. 5, pp. 575-584.
  4. Cho D.Y., Nayak J.V., Bravo D.T., Le W., Nguyen A., Edward J.A., Hwang P.H., Illek B., Fischer H. Expression of dual oxidases and secreted cytokines in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol., 2013, Vol. 3, no. 5, pp. 376-383.
  5. Du K., Wang M., Zhang N., Yu P., Wang P., Li Y, Wang X., Zhang L., Bachert C. Involvement of the extracellular matrix proteins periostin and tenascin C in nasal polyp remodeling by regulating the expression of MMPs. Clin. Transl. Allergy., 2021, Vol. 11, no. 7, e12059. doi: 10.1002/clt2.12059.
  6. Ebenezer J.A., Christensen J.M., Oliver B.G., Oliver R.A., Tjin G., Ho J., Habib A.R., Rimmer J., Sacks R., Harvey R.J. Periostin as a marker of mucosal remodelling in chronic rhinosinusitis. Rhinology, 2017, Vol. 55, no. 3, pp. 234-241.
  7. Fokkens W.J., Lund V.J., Hopkins C., Hellings P.W., Kern R., Reitsma S., Toppila-Salmi S., Bernal-Sprekelsen M., Mullol J., Alobid I., Anselmo-Lima W.T., Bachert C., Baroody F., von Buchwald C., Cervin A., Cohen N., Constantinidis J., De Gabory L., Desrosiers M., Diamant Z., Douglas R.G., Gevaert P.H., Hafner A., Harvey R.J., Joos G.F., Kalogjera L., Knill A., Kocks J.H., Landis B.N., Limpens J., Lebeer S., Lourenco O., Meco C., Matricardi P.M., O'Mahony L., Philpott C.M., Ryan D., Schlosser R., Senior B., Smith T.L., Teeling T., Tomazic P.V., Wang D.Y., Wang D., Zhang L., Agius A.M., Ahlstrom-Emanuelsson C., Alabri R., Albu S., Alhabash S., Aleksic A., Aloulah M., Al-Qudah M., Alsaleh S., Baban M.A., Baudoin T., Balvers T., Battaglia P., Bedoya J.D., Beule A., Bofares K.M., Braverman I., Brozek-Madry E., Richard B., Callejas C., Carrie S., Caulley L., Chussi D., de Corso E., Coste A., El Hadi U., Elfarouk A., Eloy P.H., Farrokhi S., Felisati G., Ferrari M.D., Fishchuk R., Grayson W., Goncalves P.M., Grdinic B., Grgic V., Hamizan A.W., Heinichen J.V., Husain S., Ping T.I., Ivaska J., Jakimovska F., Jovancevic L., Kakande E., Kamel R., Karpischenko S., Kariyawasam H.H., Kawauchi H., Kjeldsen A., Klimek L., Krzeski A., Kopacheva Barsova G., Kim S.W., Lal D., Letort J.J., Lopatin A., Mahdjoubi A., Mesbahi A., Netkovski J., Tshipukane D.N., Obando-Valverde A., Okano M., Onerci M., Ong Y.K., Orlandi R., Otori N., Ouennoughy K., Ozkan M., Peric A., Plzak J., Prokopakis E., Prepageran N., Psaltis A., Pugin B., Raftopulos M., Rombaux P., Riechelmann H., Sahtout S., Sarafoleanu C. C., Searyoh K., Rhee C.-S., Shi J., Shkoukani M., Shukuryan A.K., Sicak M., Smyth D., Sindvongs K., Kosak T.S., Stjarne P., Sutikno B., Steinsvag S., Tantilipikorn P., Thanaviratananich S., Tran T., Urbancic J., Valiulius A., de Aparicio C.V., Vicheva D., Virkkula P.M., Vicente G., Voegels R., Wagenmann M.M., Wardani R.S., Welge-Lussen A., Witterick I., Wright E., Zabolotniy D., Zsolt B., Zwetsloot C.P. European position paper on rhinosinusitis and nasal polyps. Rhinology, 2020, Vol. 58, no. S9, pp. 1-464.
  8. Ito T., Ikeda S., Asamori T., Honda K., Kawashima Y., Kitamura K., Suzuki K., Tsutsumi T. Increased expression of pendrin in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Braz. J. Otorhinolaryngol., 2019, Vol. 85, no. 6, pp. 760-765.
  9. Jiao J., Duan S., Meng N., Li Y., Fan E., Zhang L. Role of IFN-gamma, IL-13, and IL-17 on mucociliary differentiation of nasal epithelial cells in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin. Exp. Allergy., 2016, Vol. 46, no. 3, pp. 449-460.
  10. Johnston L.K., Bryce P.J. Understanding interleukin 33 and its roles in eosinophil development. Front. Med., 2017, no. 4, 51. doi: 10.3389/fmed.2017.00051.
  11. Kaneko Y., Kohno T., Kakuki T., Takano K.I., Ogasawara N., Miyata R., Kikuchi S., Konno T., Ohkuni T., Yajima R., Kakiuchi A., Yokota S.-I., Himi T., Kojima T. The role of transcriptional factor p63 in regulation of epithelial barrier and ciliogenesis of human nasal epithelial cells. Sci. Rep., 2017, Vol. 7, no. 1, 10935. doi: 10.1038/s41598-017-11481-w.
  12. Kao S.S., Bassiouni A., Ramezanpour M., Finnie J., Chegeni N., Colella A.D., Chataway T.K., Wormald P.J., Vreugde S., Psaltis .AJ. Proteomic analysis of nasal mucus samples of healthy patients and patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 147, no. 1, pp. 168-178.
  13. Kato A., Peters A.T., Stevens W.W., Schleimer R.P., Tan B.K., Kern R.C. Endotypes of chronic rhinosinusitis: Relationships to disease phenotypes, pathogenesis, clinical findings, and treatment approaches. Allergy, 2022, Vol. 77, no. 3, pp. 812-826.
  14. Kato K., Chang E.H., Chen Y., Lu W., Kim M.M., Niihori M., Hecker L., Kim K.C. MUC1 contributes to goblet cell metaplasia and MUC5AC expression in response to cigarette smoke in vivo. Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol., 2020, Vol. 319, no. 1, pp. 82-90.
  15. Kim D.K., Jin H.R., Eun K.M., Mo J.H., Cho S.H., Oh S., Cho D., Kim D.W. The role of interleukin-33 in chronic rhinosinusitis. Thorax, 2017, Vol. 72, no. 7, pp. 635-645.
  16. Klingler A.I., Stevens W.W., Tan B.K., Peters A.T., Poposki J.A., Grammer L.C., Welch K.C., Smith S.S., Conley D.B., Kern R.C., Schleimer R.P., Kato A. Mechanisms and biomarkers of inflammatory endotypes in chronic rhinosinusitis without nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 147, no. 4, pp. 1306-1317.
  17. Liao B., Cao P.P., Zeng M., Zhen Z., Wang H., Zhang Y.-N., Hu C.-Y., Ma J., Li Z.-Y., Song J., Liu J.-X., Peng L.-Y., Liu Y., Ning Q., Liu Z. Interaction of thymic stromal lymphopoietin, IL-33, and their receptors in epithelial cells in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy, 2015, Vol. 70, no. 9, pp. 1169-1180.
  18. Meng J., Zhou P., Liu Y., Liu F., Yi X., Liu S., Holtappels G., Bachert C., Zhang N. The Development of nasal polyp disease involves early nasal mucosal inflammation and remodelling. PLoS ONE, 2013, Vol. 8, no. 12, e82373. doi: 10.1371/journal.pone.0082373.
  19. Mueller S.K., Wendler O., Nocera A., Grundtner P., Schlegel P., Agaimy A., Iro H., Bleier B.S. Escalation in mucus cystatin 2, pappalysin-A, and periostin levels over time predict need for recurrent surgery in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Int. Forum Allergy Rhinol., 2019, Vol. 9, no. 10, pp. 1212-1219.
  20. Nagarkar D.R., Poposki J.A., Tan B.K., Comeau M.R., Peters A.T., Hulse K.E., Suh L.A., Norton J., Harris K.E., Grammer L.C., Chandra R.K., Conley D.B., Kern R.C., Schleimer R.P., Kato A. Thymic stromal lymphopoietin activity is increased in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2013, Vol. 132, no. 3, pp. 593-600.e12.
  21. Park S.K., Jin Y.D., Park Y.K., Yeon S.H., Xu J., Han R.N., Rha K.S. IL-25-induced activation of nasal fibroblast and its association with the remodeling of chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. PLoS ONE, 2017, Vol. 12, no. 8, e0181806. doi: 10.1371/journal.pone.0181806.
  22. Shin H.W., Kim D.K., Park M.H., Eun K.M., Lee M., So D., Kong I.G., Mo J.-H., Yang M.-S., Jin H.R., Park J.W., Kim D.W. IL-25 as a novel therapeutic target in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2015, Vol. 135, no. 6, pp. 1476-1485.e7.
  23. Soler Z.M., Yoo F., Schlosser R.J., Mulligan J., Ramakrishnan V.R., Beswick D.M., Alt J.A., Mattos J.L., Payne S.C., Storck K.A., Smith T.L. Correlation of mucus inflammatory proteins and olfaction in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol., 2020, Vol. 10, no. 3, pp. 343-355.
  24. Soyka M.B., Wawrzyniak P., Eiwegger T., Holzmann D., Treis A., Wanke K., Kast J.I., Akdis C.A. Defective epithelial barrier in chronic rhinosinusitis: The regulation of tight junctions by IFN-gamma and IL-4. J. Allergy Clin. Immunol., 2012, Vol. 130, no. 5, pp. 1087-1096.e10.
  25. Wise S.K., Laury A.M., Katz E.H., Den Beste K.A., Parkos C.A., Nusrat A. Interleukin-4 and interleukin-13 compromise the sinonasal epithelial barrier and perturb intercellular junction protein expression. Int. Forum Allergy Rhinol., 2014, Vol. 4, no. 5, pp. 361-370.
  26. Wu D., Yan B., Wang Y., Wang C., Zhang L. Prognostic and pharmacologic value of cystatin SN for chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 148, no. 2, pp. 450-460.
  27. Xu X., Luo S., Li B., Dai H., Zhang J. IL-25 contributes to lung fibrosis by directly acting on alveolar epithelial cells and fibroblasts. Exp. Biol. Med., 2019, Vol. 244, no. 9, pp. 770-780.
  28. Yan B., Lou H., Wang Y., Li Y., Meng Y., Qi S., Wang M., Xiao L., Wang C., Zhang L. Epithelium-derived cystatin SN enhances eosinophil activation and infiltration through IL-5 in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2019, Vol. 144, no. 2, pp. 455-469.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Лазарева А.М., Смирнова О.В., 2026

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).