Молекулярно-биологические свойства изолята вируса африканской чумы свиней (Asfarviridae: Asfivirus) ASF/Tatarstan 20/WB-12276
- Авторы: Шотин А.Р.1, Чернышев Р.С.1, Морозова Е.О.1, Иголкин А.С.1, Груздев К.Н.1, Колбин И.С.1, Лаврентьев И.А.1, Мазлум А.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
- Выпуск: Том 68, № 4 (2023)
- Страницы: 302-314
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/133989
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-182
- EDN: https://elibrary.ru/naxnli
- ID: 133989
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Успех искоренения африканской чумы свиней (АЧС) в неблагополучной стране в целом или конкретном регионе в частности зависит от многих факторов, включая наличие актуальных данных о циркулирующих изолятах возбудителя.
Цель работы – охарактеризовать молекулярно-биологические свойства изолята вируса АЧС ASF/Tatarstan 20/WB-12276 и провести его сравнительный анализ с изолятами из Европы и Азии.
Материалы и методы. При проведении биологической пробы использовали 8 голов свиней крупной белой породы массой 15–20 кг/гол. Исследования на наличие специфических антител к вирусу АЧС в образцах сыворотки крови проводили иммуноферментным и иммунопероксидазным методами, генома возбудителя – методом полимеразной цепной реакции в реальном времени. Выделение изолята вируса АЧС ASF/Tatarstan 20/WB-12276 и определение титра вируса осуществляли в культуре клеток селезенки свиней. Секвенирование маркерных областей генома изолята выполняли по методу Сэнгера.
Результаты. В ходе работы вирус был охарактеризован как высоковирулентный, способный вызывать АЧС от острой до подострой формы. Выявленные при проведении филогенетического анализа (по маркерам IGR/I73R-I329L и I267L) замены в геноме изолята ASF/Tatarstan 20/WB-12276 позволили объединить изучаемый вариант с изолятами, распространенными на большей части Европы и Азии.
Заключение. Впервые изучены молекулярно-биологические свойства изолята вируса АЧС ASF/Tatarstan 20/WB-12276, выделенного из селезенки от отстрелянного дикого кабана на территории Республики Татарстан.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Андрей Романович Шотин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Автор, ответственный за переписку.
Email: shotin@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0001-9884-1841
кандидат ветеринарных наук, научный сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирРоман Сергеевич Чернышев
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: chernishev_rs@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0003-3604-7161
аспирант, ветеринарный врач референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирЕлизавета Олеговна Морозова
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: morozova_eo@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0002-0955-9586
аспирант, биолог референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирАлексей Сергеевич Иголкин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: igolkin_as@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0002-5438-8026
кандидат ветеринарных наук, заведующий референтной лабораторией по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирКонстантин Николаевич Груздев
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: gruzdev@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0003-3159-1969
доктор биологических наук, профессор, главный научный сотрудник информационно-аналитического центра
Россия, 600901, г. ВладимирИван Сергеевич Колбин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: kolbin@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0003-4692-1297
аспирант, ветеринарный врач референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирИван Андреевич Лаврентьев
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: lavrentev@arriah.ru
ORCID iD: 0009-0003-0552-3812
аспирант, ведущий ветеринарный врач референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирАли Мазлум
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Email: mazlum@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0002-5982-8393
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней
Россия, 600901, г. ВладимирСписок литературы
- Иголкин А.С., Караулов А.К., Груздев К.Н. Африканская чума свиней, 2020 г. В кн.: Труды Всероссийского НИИ экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко. Том 82. М.; 2021: 58–64. https://doi.org/10.31016/viev-2021-18-8
- Шотин А.Р., Жуков И.Ю., Першин А.С., Мазлум А., Шевченко И.В., Иголкин А.С. и др. Влияние условий хранения сывороток крови свиней на выявление антител к вирусу АЧС методом ИФА. Ветеринария сегодня. 2021; (3): 216–23. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2021-3-38-216-223 https://elibrary.ru/sfvomt
- Шотин А.Р., Иголкин А.С., Мазлум А., Шевченко И.В., Бардина Н.С., Морозова Е.О. и др. Африканская чума свиней в Приморском крае: эпизоотическая ситуация и молекулярно-биологические свойства изолята, выделенного из трубчатой кости от дикого кабана. Ветеринария сегодня. 2022; 11(4): 347–58. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2022-11-4-347-358 https://elibrary.ru/uhggjy
- Балышев В.М., Власов М.Е., Иматдинов А.Р., Титов И.А., Моргунов С.Ю., Малоголовкин А.С. Биологические свойства и молекулярно-генетическая характеристика вируса африканской чумы свиней, выделенного в 2016-2017 гг. в различных регионах Российской Федерации. Российская сельскохозяйственная наука. 2018; (4): 54–7. https://doi.org/10.31857/S250026270000536-4 https://elibrary.ru/yamjtn
- Болгова М.В., Моргунов Ю.П., Васильев А.П., Балышев В.М. Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в Российской Федерации в 2012 г. Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2013; (4): 26–30. https://elibrary.ru/rppyxf
- Власов М.Е., Сибгатуллова А.К., Балышев В.М. Особенности течения африканской чумы у свиней, инфицированных изолятами вируса АЧС, выделенными в Российской Федерации. Ветеринария. 2019; (4): 15–9. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2019.22.4.15-19 https://elibrary.ru/eohxkh
- Власов М.Е. Клинические проявления болезни и патологоанатомические изменения у свиней, инфицированных изолятами вируса АЧС, выделенными от кабанов. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2017; (134): 1055–65. https://doi.org/10.21515/1990-4665-134-086 https://elibrary.ru/ynwynm
- Pershin A., Shevchenko I., Igolkin A., Zhukov I., Mazloum A., Aronova E., et al. A long-term study of the biological properties of ASF virus isolates originating from various regions of the Russian Federation in 2013–2018. Vet. Sci. 2019; 6(4): 99. https://doi.org/10.3390/vetsci6040099 https://elibrary.ru/eybfvu
- Ремыга С.Г., Першин А.С., Шевченко И.В., Иголкин А.С., Шевцов А.А. Клинические и патологоанатомические изменения у диких европейских кабанов и домашних свиней при заражении вирусом африканской чумы свиней. Ветеринария сегодня. 2016; (3): 46–51. https://elibrary.ru/wwrlmf
- Жуков И.Ю. Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней и особенности течения болезни при экспериментальном заражении: Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Владимир; 2018.
- Шевченко И.В. Биологические свойства и анализ полных геномов российских изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в 2013-2014 гг.: Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Владимир; 2017.
- Events management / WAHIS / https://wahis.woah.org/#/event-management (дата обращения: 06.02.2022).
- Desmecht D., Gerbier G., Gortázar Schmidt C., Grigaliuniene V., Helyes G., Kantere M., et al. Epidemiological analysis of African swine fever in the European Union (September 2019 to August 2020). EFSA J. 2021; 19(5): e06572. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2021.6572
- Караулов А.К., Шевцов А.А., Петрова О.Н., Коренной Ф.И., Гуленкин В.М. Эпизоотия АЧС на территории Российской Федерации: прогноз развития ситуации на 2021 год и рекомендации по мерам ее сдерживания. БИО. 2021; (2): 14–21. https://elibrary.ru/jqnqdk
- Петрова О.Н., Коренной Ф.И., Караулов А.К. Эпизоотия африканской чумы свиней на территории Российской Федерации: оценка ущерба на основании обобщенных данных об эпизоотической ситуации за 2007–2020 гг. БИО. 2021; (3): 18–22. https://elibrary.ru/afppww
- Mazloum A., van Schalkwyk A., Chernyshev R., Igolkin A., Heath L., Sprygin A. A guide to molecular characterization of genotype II African swine fever virus: essential and alternative genome markers. Microorganisms. 2023; 11(3): 642. https://doi.org/10.3390/microorganisms11030642
- Vilem A., Nurmoja I., Niine T., Riit T., Nieto R., Viltrop A., et al. Molecular characterization of African swine fever virus isolates in Estonia in 2014–2019. Pathogens. 2020; 9(7): 582. https://doi.org/10.3390/pathogens9070582
- Phologane S.B., Bastos A.D., Penrith M.L. Intra- and inter-genotypic size variation in the central variable region of the 9RL open reading frame of diverse African swine fever viruses. Virus Genes. 2005; 31(3): 357–60. https://doi.org/10.1007/s11262-005-3254-z
- Nix R.J., Gallardo C., Hutchings G., Blanco E., Dixon L.K. Molecular epidemiology of African swine fever virus studied by analysis of four variable genome regions. Arch. Virol. 2006; 151(12): 2475–94. https://doi.org/10.1007/s00705-006-0794-z
- Rowlands R.J., Michaud V., Heath L., Hutchings G., Oura C., Vosloo W., et al. African swine fever virus isolate, Georgia, 2007. Emerg. Infect. Dis. 2008; 14(12): 1870–4. https://doi.org/10.3201/eid1412.080591
- Gallardo C., Mwaengo D.M., Macharia J.M., Arias M., Taracha E.A., Soler A., et al. Enhanced discrimination of African swine fever virus isolates through nucleotide sequencing of the p54, p72, and pB602L (CVR) genes. Virus Genes. 2009; 38(1): 85–95. https://doi.org/10.1007/s11262-008-0293-2
- Lubisi B.A., Bastos A.D., Dwarka R.M., Vosloo W. Intra-genotypic resolution of African swine fever viruses from an East African domestic pig cycle: a combined p72-CVR approach. Virus Genes. 2007; 35(3): 729–35. https://doi.org/10.1007/s11262-007-0148-2
- Sidi M., Zerbo H.L., Ouoba B.L., Settypalli T.B.K., Bazimo G., Ouandaogo H.S., et al. Molecular characterization of African swine fever viruses from Burkina Faso, 2018. BMC Vet. Res. 2022; 18(1): 69. https://doi.org/10.1186/s12917-022-03166-y
- Mazloum A., Van Schalkwyk A., Chernyshev R., Shotin A., Korennoy F.I., Igolkin A., et al. Genetic characterization of the central variable region in African swine fever virus isolates in the Russian Federation from 2013 to 2017. Pathogens. 2022; 11(8): 919. https://doi.org/10.3390/pathogens11080919 https://elibrary.ru/ojluot
- Mazur-Panasiuk N., Walczak M., Juszkiewicz M., Woźniakowski G. The spillover of African swine fever in western Poland revealed its estimated origin on the basis of O174L, K145R, MGF 505-5R and IGR I73R/I329L genomic sequences. Viruses. 2020; 12(10): 1094. https://doi.org/10.3390/v12101094
- Shi K., Liu H., Yin Y., Si H., Long F., Feng S. Molecular characterization of African swine fever virus from 2019-2020 outbreaks in Guangxi province, Southern China. Front. Vet. Sci. 2022; 9: 912224. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.912224.
- Mazur-Panasiuk N., Woźniakowski G. The unique genetic variation within the O174L gene of Polish strains of African swine fever virus facilitates tracking virus origin. Arch. Virol. 2019; 164(6): 1667–72. https://doi.org/10.1007/s00705-019-04224-x
- Mazloum A., van Schalkwyk A., Shotin A., Zinyakov N., Igolkin A., Chernishev R., et al. Whole-genome sequencing of African swine fever virus from wild boars in the Kaliningrad region reveals unique and distinguishing genomic mutations. Front. Vet. Sci. 2023; 9: 1019808. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1019808.
- Mazloum A., van Schalkwyk A., Shotin A., Igolkin A., Shevchenko I., Gruzdev K.N., et al. Comparative analysis of full genome sequences of African swine fever virus isolates taken from wild boars in Russia in 2019. Pathogens. 2021; 10(5): 521. https://doi.org/10.3390/pathogens10050521 https://elibrary.ru/mwsggz
- Zhang Y., Ke J., Zhang J., Yue H., Chen T., Li Q., et al. I267L is neither the virulence- nor the replication-related gene of African swine fever virus and its deletant is an ideal fluorescent-tagged virulence strain. Viruses. 2021; 14(1): 53. https://doi.org/10.3390/v14010053
- Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol. 2018; 35(6): 1547–9. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096
- Балышев В.М., Куриннов В.В., Цыбанов С.Ж., Калантаенко Ю.Ф., Колбасов Д.В., Пронин В.В. и др. Биологические свойства вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации. Ветеринария. 2010; (7): 25–7. https://elibrary.ru/msrezn
- Gallardo M.C., Reoyo A.T., Fernández-Pinero J., Iglesias I., Muñoz M.J., Arias M.L. African swine fever: a global view of the current challenge. Porcine Health Manag. 2015; 1: 21. https://doi.org/10.1186/s40813-015-0013-y
- Gallardo C., Fernández-Pinero J., Arias M. African swine fever (ASF) diagnosis, an essential tool in the epidemiological investigation. Virus Res. 2019; 271: 197676. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2019.197676
- Gap Analysis Report. Global African Swine Fever; 2018. Available at: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/np103/SymposiumWorkshopsMeetings/GARA%20Gap%20Analysis%20Report%202018%2011-11-18.pdf
- Mur L., Igolkin A., Varentsova A., Pershin A., Remyga S., Shevchenko I., et al. Detection of African swine fever antibodies in experimental and field samples from the Russian Federation: implications for control. Transbound. Emerg. Dis. 2016; 63(5): e436–40. https://doi.org/10.1111/tbed.12304 https://elibrary.ru/xslmnr
- OIE Terrestrial Manual. Chapter 3.8. 1. African swine fever (infection with African swine fever virus). OIE; 2019.
- Gervasi V., Marcon A., Bellini S., Guberti V. Evaluation of the efficiency of active and passive surveillance in the detection of African swine fever in wild boar. Vet. Sci. 2019; 7(1): 5. https://doi.org/10.3390/vetsci70100055
Дополнительные файлы
