(Strept)avidin Binds Glycoconjugates

Capa

Citar

Texto integral

Resumo

Fluorescently labeled and conjugated (strept)avidin is widely used for imaging of biotinylated molecules in immunological assays and histochemistry. The presented article shows that in addition to biotin, these proteins bind a number of glycans, including fragments of glycoprotein and glycolipid chains of mammals, in particular, antigens of the ABO blood system, oligolactosamines, 6-O-sulfated oligosaccharides. This interaction is inhibited in a dose-dependent manner by glycans in a form of polymeric (but not monomeric) conjugates at the micromolar concentration level, i.e. requires polyvalence. Taking into account the cluster organization of cell glycans (glycoproteins and glycolipids), when analyzing objects containing carbohydrates, this property is a potential source of error, that can be prevented by avoiding a large excess of (strept)avidin in the analytical system.

Texto integral

Принятые сокращения: ПХ – пероксидаза хрена; ФСБ – фосфатно-солевой буфер.

ВВЕДЕНИЕ

(Стрепт)авидин широко используется в огромном количестве тест-систем благодаря уникально высокой (10−14 М) константе связывания с биотином [1]. Однако биотин является не единственным его лигандом; ранее было описано низкоаффинное взаимодействие с нуклеозидами [2] и пептидами [3], а моносахарид манноза ингибировал на миллимолярном уровне взаимодействие как стрептавидина, так и авидина с биотинилированным кальретикулином при изучении гликан-связывающих свойств последнего с помощью планшетного твердофазного метода анализа и блот-анализа [4]; аналогичная активность была продемонстрирована для сахарозы [5], мальтозы [6] и глюкозы [7]. Несмотря на наличие литературных данных, подавляющее большинство специалистов в области биоаналитической химии не учитывает риск побочного взаимодействия (стрепт)авидина с гликанами. Лишь обнаружив такое неожиданное взаимодействие, авторы настоящей работы провели литературный поиск и нашли цитированные выше статьи. Последующее целенаправленное исследование, проведённое с помощью таких вариантов твердофазного анализа, как представительный гликановый эррей (в формате микрочипа) и планшетный анализ, показало, что (стрепт)авидин взаимодействует со многими гликанами, в том числе характерными для тканей и клеток млекопитающих.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Соли и другие неорганические реагенты были производства компании «Sigma-Aldrich» (Сент-Луис, Миссури, США).

Гликановый эррей. Гликановый эррей, содержащий 174 аминоспейсерированных гликана и соответствующие им полиакриламидные гликоконъюгаты, Glyc-PAA, где Glyc – остаток гликана, а РАА – полиакриламид молекулярной массы ~20 кДа («GlycoNZ», Окленд, Новая Зеландия), печатали в формате микрочипа (далее термины «гликановый эррей», «микрочип» и «чип» будут использованы как эквивалентные) методом роботизированного нанесения бесконтактным принтером sciFLEXARRAYER S5 («Scienion», Берлин, Германия) 0,9 нл растворов гликанов или РАА-конъюгатов в буфере для печати (300 мМ фосфатный буфер, рН 8,5, содержащий 0,001%-ный Tween-20) на стёкла размером 25 × 75 мм, активированные N-гидроксисукцинимидом (Slide H, «Schott Nexterion», Йена, Германия). Концентрация гликанов в буфере для печати составляла 50 мкМ. Все лиганды были напечатаны в шести повторах. Размер наносимых пятен ~80 мкм. После печати чипы инкубировали в течение 1 ч при комнатной температуре и 75%-ной влажности. Затем, согласно протоколу производителя активированных слайдов, оставшиеся N-гидроксисукцинимидные группы блокировали погружением чипов в блокировочный буфер (25 мМ этаноламин в 100 мМ боратном буфере, содержащий 0,2%-ный Tween-20, рН 8,5) на 1,5 ч. Контроль иммобилизации лигандов осуществляли с помощью поликлональных антител сыворотки крови человека, а также с использованием наборов растительных лектинов и моноклональных антител (как описано, например, в работе Obukhova et al. [8]).

Взаимодействие стрептавидина с гликанами чипа. 1 мл раствора стрептавидина, меченного красителем Alexa 555 («Invitrogen», Карлсбад, Калифорния, США), в концентрации 1 мкг/мл (18 нМ) в фосфатно-солевом буфере (ФСБ, «Эко-Сервис», Санкт-Петербург, Россия), содержащем 0,1%-ный (v/v) Tween-20 («Sigma-Aldrich») (ФСБ-0,1%), наносили на чип (предварительно смоченный в ФСБ-0,1% в течение 10 мин при комнатной температуре) и инкубировали в течение 1 ч при 37 °C и 75%-ной влажности. Затем чип дважды промывали ФСБ, содержащим 0,05%-ный Tween-20, и, на заключительном этапе, бидистиллированной водой, после чего высушивали центрифугированием и сканировали (разрешение 10 мкм) с помощью флуоресцентного сканера InnoScan 1100 AL («Innopsys», Карбон, Франция). Изображения преобразовывали в таблицу Excel с помощью программного обеспечения ScanArray Express 4.0 с использованием метода фиксированных колец («PerkinElmer», Шелтон, Коннектикут, США) и GAL-файла. Результаты представляли в виде медианы относительных единиц флуоресценции (ОЕФ). Сигналы величины, в 10 раз превышающей ОЕФ фона (сигналы от пятен, не содержащих гликанов), считали значимыми.

Взаимодействие рицинового агглютинина (RCA 120) с гликанами чипа. 1 мл раствора биотинилированного RCA 120 («Vector Laboratories», Ньюарк, Калифорния, США) в концентрации 10 мкг/мл в ФСБ-0,1% наносили на микрочип и инкубировали в течение 1 ч при 37 °C и 75%-ной влажности с последующей промывкой ФСБ-0,05%. Затем наносили 1 мл раствора стрептавидина, меченного Alexa 555 («Invitrogen»), в концентрации 1 мкг/мл (18 нМ) или 0,1 мкг/мл (1,8 нМ) в ФСБ-0,1% и инкубировали в течение 1 ч при 37 °C и 75%-ной влажности. Затем были выполнены последующие этапы, как описано в разделе «Взаимодействие стрептавидина с гликанами чипа».

96-Луночный твердофазный анализ. Взаимодействие стрептавидина и авидина с гликоконъюгатами. Прямое связывание. В лунки планшетов (NUNC Maxisorp, «Thermo Fisher Scientific», Уолтем, Массачусетс, США) вносили по 100 мкл растворов конъюгатов Glyc-РАА («GlycoNZ») в двух повторах, в двукратном разведении, начиная с 20 мкг/мл, в 0,05 М Na-карбонатном буфере, рН 9,6, и инкубировали в течение 1 ч при 37 °C, после чего вносили 120 мкл 1%-ного бычьего сывороточного альбумина, БСА («Sigma-Aldrich»), в ФСБ и выдерживали в течение 1 ч при 37 °C. Затем лунки трижды промывали ФСБ-0,05%, после чего прибавляли 100 мкл раствора стрептавидина, меченного пероксидазой хрена (ПХ), cтрептавидина-ПХ («Southern Biotech», Бирмингем, Алабама, США), или авидина-ПХ («BioLegend», Сан-Диего, Калифорния, США) в концентрации 0,1 мкг/мл (1,8 нМ) в ФСБ, содержащем 0,3% БСА (ФСБ-0,3% БСА), и инкубировали в течение 1 ч при 37 °C. После промывки, как описано выше, проводили оценку ферментативной активности пероксидазы путём 30-минутной инкубации с буфером, состоящим из 0,1 М фосфата натрия/0,1 М лимонной кислоты, содержащим 0,04%-ный о-фенилендиамин и 0,03%-ную H2O2 (100 мкл/лунка), что сопровождалось изменением цветности субстратного раствора. Реакцию останавливали добавлением в лунки планшета 50 мкл 1 М H2SO4. Оптическую плотность (ОП) регистрировали при длине волны 492 нм с помощью многофункционального планшетного анализатора Wallac Victor2 1420 («PerkinElmer», Шелтон, Коннектикут, США). Все эксперименты проводили дважды, разброс между значениями не превышал 10%.

Ингибирование взаимодействия стрептавидина с гликоконъюгатами. В лунки планшетов вносили по 100 мкл раствора конъюгата GlcNAcα-РАА в концентрации 10 мкг/мл в 0,05 М Na-карбонатном буфере, рН 9,6, после чего лунки блокировали и промывали, как указано в разделе «Взаимодействие стрептавидина и авидина с гликоконъюгатами. Прямое связывание». Последовательные двукратные разведения ингибиторов – гликанов в спейсерированной или в РАА-форме (50 мкл/лунка, начальная концентрация 0,5 мМ по Glyc в ФСБ-0,3% БСА) – добавляли одновременно со стрептавидин-ПХ (0,2 мкг/мл, 50 мкл/лунка) в ФСБ-0,3% БСА, и планшет инкубировали в течение 1 ч при 37 °C, трижды промывали промывочным буфером, затем проводили измерение ферментативной активности пероксидазы, как указано в разделе «Взаимодействие стрептавидина и авидина с гликоконъюгатами. Прямое связывание».

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

С помощью микрочипа обнаружено, что флуоресцентно меченный стрептавидин взаимодействует с несколькими десятками моно- и олигосахаридов, иммобилизованных на чипе (около 50 из 174). На рис. 1 показаны 15 наиболее активных (топовых) гликанов, включая мальтозу, связывание которой со стрептавидином наблюдалось ранее [6], более подробно эти данные приведены в Приложении 1. Интенсивность сигналов была сравнима с интенсивностью «канонических» углеводсвязывающих белков – лектинов (что показано, например, в работах Ahmad et al. и Shilova et al. [9, 10]).

 

Рис. 1. Гликаны, показавшие наилучшее взаимодействие со стрептавидином, меченным Alexa 555 (в концентрации 1 мкг/мл). Гликановый эррей состоял из 174 гликанов, иммобилизованных в виде полиакриламидных конъюгатов, Glyc-РАА [11]. Максимально возможное значение флуоресценции (ОЕФ) в этой аналитической системе составляет около 65 000; сигналы от пятен, не содержащих лигандов, то есть фон, не превышают 100 ОЕФ. Все моносахариды, за исключением рамнозы, являются D-пиранозами. Тривиальные названия олигосахаридов приведены в круглых скобках. См. подробнее в Приложении 1

 

Среди связывающих гликанов отметим антигены группы крови АВО – олигосахариды В и Н, олиголактозамины, а также 6-О-сульфатированные олигосахариды, то есть те, которые типичны для гликопротеинов и гликолипидов человека.

С помощью 96-луночного твердофазного анализа, который включал семь гликанов, проявивших активность в составе чипа, была показана концентрационная зависимость взаимодействия (рис. 2, а).

 

Рис. 2. Взаимодействие стрептавидина, меченного ПХ (в концентрации 0,1 мкг/мл), с конъюгатами Glyc-РАА: а – концентрационная зависимость взаимодействия с гликоконъюгатами, иммобилизованными в лунках 96-луночного планшета; б – дозозависимое ингибирование взаимодействия меченого стрептавидина с иммобилизованным GlcNAcα-РАА с помощью GlcNAcα-РАА и GlcNAcβ-РАА, а также неконъюгированными GlcNAcα-sp и GlcNAcβ-sp (sp – спейсер). ОП – оптическая плотность

 

Взаимодействие с гликанами было воспроизводимым при использовании стрептавидина разных производителей («Invitrogen», «SouthernBiotech» и «Sigma-Aldrich») с разными метками (ПХ и Alexa 555). Подобно стрептавидину, авидин взаимодействовал с GlcNAcα, трисахаридом Н типа 3 и сульфатированными гликанами (данные не показаны).

Согласно проведённому ингибиторному анализу, взаимодействие стрептавидина с углеводами дозозависимо ингибируется конъюгатами Glyc-РАА в диапазоне концентраций (по гликану) от 15 до 500 мкМ, как показано на примере GlcNAcα-РАА – гликоконъюгата, проявившего максимальную активность как на микрочипе, так и в планшетном твердофазном анализе. Отметим, что GlcNAcβ-РАА такого действия не оказывал (рис. 2, б). Мономерные (неконъюгированные) гликаны не оказывали ингибирующего действия в этом диапазоне концентраций, т.е. взаимодействие требует поливалентности, которая, по-видимому, реализуется всеми свободными (т.е. не занятыми меткой или ПХ) субъединицами стрептавидина, с одной стороны, и множеством копий остатка Glyc, присоединённого к полимерной цепи, – с другой. Сайт связывания белка с гликаном не совпадает с сайтом связывания биотина, в противном случае биотин вытеснил бы значительно менее аффинный гликан в используемой тест-системе, чего не происходило.

Следует отметить, что диапазон микромолярных концентраций типичен для углеводных ингибиторов антигликановых антител и лектинов и соответствует микромолярному диапазону констант аффинности [9, 10, 12], которые достаточно высоки, чтобы от нежелательного связывания стрептавидина с углеводом можно было бы освободиться с помощью интенсификации стадии промывки комплекса при проведении анализа.

Высокая аффинность биотина по отношению к стрептавидину создаёт предпосылку уменьшения концентрации стрептавидиновых реагентов в аналитических системах, чтобы тем самым без потери аналитического сигнала понизить нежелательное связывание с гликанами. Чтобы проверить такую возможность, биотинилированный лектин RCA120 был проявлен с помощью флуоресцентно меченного стрептавидина в двух концентрациях – 1 мкг/мл (используется обычно) и 0,1 мкг/мл. На рис. 3 показано, что десятикратное снижение концентрации в целом не влияло ни на интенсивность наблюдаемого сигнала, ни на профиль взаимодействия RCA120 c гликанами.

 

Рис. 3. Снижение концентрации стрептавидина при визуализации связывания RCA120 с его лигандами не повлияло ни на общую интенсивность сигнала, ни на профиль взаимодействия. Коэффициент корреляции Пирсона равен 0,92. См. подробнее в Приложении 2

 

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Система (стрепт)авидин-биотин имеет многолетнюю историю использования в качестве инструмента для детекции в различных аналитических системах. Наряду с многочисленными публикациями о её успешном использовании существуют работы, свидетельствующие о получении ложноположительных результатов при выявлении антигенов человека и животных [13–15]. Среди прочих причин в цитируемых работах обнаруженные факты объясняли присутствием биотиноподобных молекул в тканях и/или влиянием эндогенных гликанов [15]. Авторы [16] отмечали, что использование стрептавидина в сэндвич-формате твердофазного анализа следует проводить с осторожностью из-за возможного влияния углеводов, содержащихся в образцах. При изучении супрамолекулярных конструктов на основе авидина были выдвинуты аналогичные объяснения [6].

Наши исследования показали, что стрептавидин и авидин способны связываться с широким кругом гликанов, в том числе типичных для клеток млекопитающих. Несмотря на то, что выявленные углеводные лиганды относятся к структурно разным классам, эти взаимодействия не являются неспецифическими, а скорее полиреактивными, что характерно для ряда лектинов. Очевидно, что в действительности круг (стрепт)-авидин-позитивных гликанов ещё шире, поэтому необходимо проявлять осторожность при оценке результатов экспериментов, проводимых с использованием этих белков в биоаналитических тест-системах. Отметим также, что взаимодействие (стрепт)авидина с гликанами в конкретной тест-системе будет зависеть от степени гликозилирования изучаемого объекта, присутствия детергентов и блокирующих агентов и множества других факторов.

Общим решением этой проблемы является уменьшение количества конъюгированного (стрепт)авидина, который обычно берут в неоправданном избытке (как показано в данном исследовании), или применением конъюгата с полипероксидазой, в котором содержание стрептавидина снижено. Следует также отметить, что использование пары (стрепт)авидин-биотин не ограничивается фундаментальными исследованиями и диагностикой in vitro, (стрепт)авидиновая система апробируется для доставки лекарств [17, 18], где обнаруженная полиреактивность этих белков становится потенциальным источником побочных эффектов.

Благодарности. Эта работа выполнена при поддержке гранта Российского научного фонда № 20-63-47110.

Вклад авторов. Надежда В. Шилова и Николай В. Бовин – концептуализация, планирование экспериментов, написание рукописи, рецензирование и редактирование; Алексей Ю. Нокель – печать эрреев, анализ данных; Светлана М. Полякова, Александр Д. Липатников, Елена А. Гордеева и Марина В. Лаврентьева – проведение экспериментов с гликановыми эрреями и твердофазным анализом, анализ данных и подготовка рисунков.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в финансовой или какой-либо другой сфере.

Соблюдение этических норм. Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с участием людей и животных в качестве объектов исследований.

Дополнительные материалы. Приложения к статье опубликованы на сайте журнала «Биохимия» (https://biochemistrymoscow.com).

×

Sobre autores

N. Shilova

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences; Academician Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology

Autor responsável pela correspondência
Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow; 117997, Moscow

S. Polyakova

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow

A. Nokel

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences; Academician Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow; 117997, Moscow

A. Lipatnikov

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow

E. Gordeeva

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow

M. Lavrentyeva

MIREA – Russian Technological University

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 119571, Moscow

N. Bovin

Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences

Email: pumatnv@gmail.com
Rússia, 117997, Moscow

Bibliografia

  1. Green, M. N. (1990) Avidin and streptavidin, Methods Enzymol., 184, 51-67, https://doi.org/10.1016/0076-6879(90)84259-J.
  2. Bing, T., Chang, T., Qi, C., Zhang, N., Liu, X., and Shangguan, D. (2012) Specific interactions between adenosine and streptavidin/avidin, Bioorg. Med. Chem. Lett., 22, 7052-7055, https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2012.09.088.
  3. Caparon, M. H., De Ciechi, P. A., Devine, C. S., Olins, P. O., and Lee, S. C. (1996) Analysis of novel streptavidin-binding peptides, identified using a phage display library, shows that amino acids external to a perfectly conserved consensus sequence and to the presented peptides contribute to binding, Mol. Divers., 1, 241-246, https://doi.org/10.1007/BF01715528.
  4. Houen, G., and Hansen, K. (1997) Interference of sugars with the binding of biotin to streptavidin and avidin, J. Immunol. Methods, 210, 115-123, https://doi.org/10.1016/S0022-1759(97)00166-X.
  5. Smith, J. A., Xu, G., Feng, R., Janetka, J. W., and Moeller, K. D. (2016) C‐glycosides, array‐based addressable libraries, and the versatility of constant current electrochemistry, Electroanalysis, 28, 2808-2817, https://doi.org/10.1002/elan.201600200.
  6. Ennen, F., Boye, S., Lederer, A., Cernescu, M., Komber, H., Brutschy, B., Voit, B., and Appelhans, D. (2014) Biohybrid structures consisting of biotinylated glycodendrimers and proteins: influence of the biotin ligand’s number and chemical nature on the biotin–avidin conjugation, Polym. Chem., 5, 1323-1339, https://doi.org/10.1039/C3PY01152F.
  7. Beber, A., Alqabandi, M., Prévost, C., Viars, F., Lévy, D., Bassereau, P., Bertin, A., and Mangenot, S. (2019) Septin‐based readout of PI(4,5)P2 incorporation into membranes of giant unilamellar vesicles, Cytoskeleton, 76, 92-103, https://doi.org/10.1002/cm.21480.
  8. Obukhova, P., Tsygankova, S., Chinarev, A., Shilova, N., Nokel, A., Kosma, P., and Bovin, N. (2020) Are there specific antibodies against Neu5Gc epitopes in the blood of healthy individuals? Glycobiology, 30, 395-406, https://doi.org/10.1093/glycob/cwz107.
  9. Ahmad, N., Gabius, H.-J., Kaltner, H., André, S., Kuwabara, I., Liu, F.-T., Oscarson, S., Norberg, T., and Brewer, C. F. (2002) Thermodynamic binding studies of cell surface carbohydrate epitopes to galectins-1, -3, and -7: evidence for differential binding specificities, Canad. J. Chem., 80, 1096-1104, https://doi.org/10.1139/v02-162.
  10. Shilova, N., Bovin, N., Maltseva, D., Polyakova, S., Sablina, M., Niwa, H., Zakharova, G., Raygorodskaya, M., Bufeeva, L., Belyi, Y., Hushpulian, D., and Tonevitsky, A. (2022) Specificity of viscumin revised. As probed with a printed glycan array, Biochimie, 202, 94-102, https://doi.org/10.1016/j.biochi.2022.08.009.
  11. Tuzikov, A., Chinarev, A., Shilova, N., Gordeeva, E., Galanina, O., Ovchinnikova, T., Schaefer, M., and Bovin, N. (2021) 40 years of glyco-polyacrylamide in glycobiology, Glycoconj. J., 38, 89-100, https://doi.org/10.1007/s10719-020-09965-5.
  12. Obukhova, P., Rieben, R., and Bovin, N. (2007) Normal human serum contains high levels of anti-Galα1-4GlcNAc antibodies, Xenotransplantation, 14, 627-635, https://doi.org/10.1111/j.1399-3089.2007.00436.x.
  13. Duhamel, R. C., and Whitehead, J. S. (1990) Prevention of nonspecific binding of avidin, 201-207, https://doi.org/ 10.1016/0076-6879(90)84275-L.
  14. Nyhlin, N., El-Salhy, M., Sandström, O., and Suhr, O. (1997) Evaluation of immunohistochemical staining of human duodenal endocrine cells after microwave antigen retrieval, Histochem. J., 29, 177-181, https://doi.org/ 10.1023/a:1026441623791.
  15. Kim, S. H., Jung, K. C., Shin, Y. K., Lee, K. M., Park, Y. S., Choi, Y. L., Oh, K. I., Kim, M. K., Chung, D. H., Son, H. G., and Park, S. H. (2002) The enhanced reactivity of endogenous biotin-like molecules by antigen retrieval procedures and signal amplification with tyramine, Histochem. J., 34, 97-103, https://doi.org/10.1023/a:1020954611464.
  16. Shone, C., Ferreira, J., Boyer, A., Cirino, N., Egan, C., Evans, E., Kools, J., and Sharma, S. (2006) The 5th international conference on basic and therapeutic aspects of Botulinum and tetanus neurotoxins. Workshop review: assays and detection, Neurotox. Res., 9, 205-216, https://doi.org/10.1007/BF03033940.
  17. Dundas, C. M., Demonte, D., and Park, S. (2013) Streptavidin–biotin technology: improvements and innovations in chemical and biological applications, Appl. Microbiol. Biotechnol., 97, 9343-9353, https://doi.org/10.1007/s00253-013-5232-z.
  18. Jain, A., and Cheng, K. (2017) The principles and applications of avidin-based nanoparticles in drug delivery and diagnosis, J. Controll. Rel., 245, 27-40, https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.11.016.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Supplementary 1
Baixar (16KB)
Metadados
3. Supplementary 2
Baixar (36KB)
Metadados
4. Fig. 1. Glycans that showed the best interaction with Alexa 555-labelled streptavidin (at a concentration of 1 µg/ml). The glycan errey consisted of 174 glycans immobilised as polyacrylamide conjugates, Glyc-RAA [11]. The maximum possible fluorescence (OEF) value in this analytical system is about 65,000; signals from ligand-free spots, i.e. background, do not exceed 100 OEF. All monosaccharides except rhamnose are D-pyranoses. Trivial names of oligosaccharides are given in parentheses. See Appendix 1 for more details

Baixar (173KB)
Metadados
5. Fig. 2. Interaction of PC-labelled streptavidin (at a concentration of 0.1 µg/ml) with Glyc-PAA conjugates: a - concentration dependence of the interaction with glycoconjugates immobilised in the wells of a 96-well plate; b - dose-dependent inhibition of the interaction of labelled streptavidin with immobilised GlcNAcα-RAA by GlcNAcα-RAA and GlcNAcβ-RAA, and unconjugated GlcNAcα-sp and GlcNAcβ-sp (sp - spacer). OD - optical density

Baixar (213KB)
Metadados
6. Fig. 3. Decreasing the concentration of streptavidin when visualising the binding of RCA120 to its ligands did not affect the overall signal intensity or the interaction profile. The Pearson correlation coefficient is 0.92. See Appendix 2 for more details

Baixar (79KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».