Ретроплацентарная кровь – новый субстрат для клинических исследований
- Авторы: Самусевич А.Н.1, Проскурнина Е.В.2, Игнатко И.В.1, Панина О.Б.3
-
Учреждения:
- Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)
- Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова
- Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 36, № 1 (2025)
- Страницы: 5-8
- Раздел: Актуальная тема
- URL: https://ogarev-online.ru/0236-3054/article/view/287212
- DOI: https://doi.org/10.29296/25877305-2025-01-01
- ID: 287212
Цитировать
Аннотация
Обзор посвящен особенностям материнской артериальной крови, поступающей в межворсинчатое пространство из спиральных артерий. Помимо определения термина «ретроплацентарная кровь» в статье подробно описана возможная методика взятия ее проб. Кроме того, представлены результаты исследований ретроплацентарной крови, которые были проведены к настоящему моменту и касались в основном изучения иммунологических показателей, гормонов и гормоноподобных веществ, а также ферментов.
Таким образом, ретроплацентарная кровь является уникальным и практически неизученным биологическим субстратом, который может быть полезен в клинической медицине.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
А. Н. Самусевич
Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: samusevich94@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1102-2737
Россия, Москва
Е. В. Проскурнина
Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова
Email: samusevich94@mail.ru
доктор медицинских наук, доцент
Россия, МоскваИ. В. Игнатко
Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)
Email: samusevich94@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9945-3848
член-корреспондент РАН, доктор медицинских наук, профессор
Россия, МоскваО. Б. Панина
Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
Email: samusevich94@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1397-6208
доктор медицинских наук, профессор
Россия, МоскваСписок литературы
- Панина О.Б., Самусевич А.Н., Проскурнина Е.В. и др. Изучение биохимических показателей ретроплацентарной крови и их значение в клинической медицине. Технологии живых систем. 2022; 19 (4): 60–9 [Panina O.B., Samusevich A.N., Proskurnina E.V. et al. Retroplacental blood biochemical characteristics investigation and their value in clinical medicine. Technologies of Living Systems. 2022; 19 (4): 60–9 (in Russ.)]. doi: 10.18127/j20700997-202204-06
- Csorba R., Soliman A.A., Wieg C. et al. Correlation of rheological parameters in maternal and fetal blood at term. J Matern Fetal Neonatal Med. 2015; 28 (8): 969–76. doi: 10.3109/14767058.2014.939626
- Grudsinkas J.G., Menabawey M., Wiley B. A. et al. The relation between the concentration of placental specific proteins in retroplacental and peripheral blood. Br J Obstet Gynaecol. 1979; 86 (11): 891–3. doi: 10.1111/j.1471-0528.1979.tb10718.x
- Bromberg Y.M., Salzberger M., Abrahamov A. Does retroplacental hematoma contain fetal blood. Am J Obstet Gynecol. 1957; 74 (3): 674–6. doi: 10.1016/0002-9378(57)90527-6
- Dai Y., Liu J., Yuan E. et al. Gestational age-specific reference intervals for 15 biochemical measurands during normal pregnancy in China. Ann Clin Biochem. 2018; 55 (4): 446–52. doi: 10.1177/0004563217738801
- Norman M., Eriksson C.G., Eneroth P.A. Сomparison between the composition of maternal peripheral plasma and plasma collected from the retroplacental compartment at caesarean section. Arch Gynecol Obstet. 1989; 244 (4): 215–26. doi: 10.1007/BF01560085
- Yoshida M., Kanzaki H., Tokushige M. et al. Detection of immunoregulatory factors in retroplacental serum in human pregnancy. Am J Reprod Immunol. 1989; 19 (4): 141–5. doi: 10.1111/j.1600-0897.1989.tb00564.x
- Ahmed A.G., Klopper A. The concentrations of SP1 beta and SP1 alpha in retroplacental and peripheral blood at term. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 1983; 16 (2): 77–81. doi: 10.1016/0028-2243(83)90103-x
- Briese V., Kunkel S. Plath C. et al. Sialic acid, steroids and proteohormones in maternal, cord and retroplacental blood. Z Geburtshilfe Neonatol. 1999; 203 (2): 63–8.
- Aarli A., Matre R. Suppression of immunoglobulin secretion by soluble annexin II. Scand J Immunol. 1998; 48 (5): 522–6. doi: 10.1046/j.1365-3083.1998.00436.x
- Zdanowicz A., Jabłońska E., Pietruska Z. et al. Complement levels of C4, C3C, factor B, and C1 inactivator in peripheral and retroplacental blood of parturient women with EPH gestosis. Annals of the Medical University. 1993; 38 (1): 60–7.
- Nicholas N.S., Panayi G.S., Murphy J. et al. Human retroplacental sera inhibit the expression of class II major histocompatibility antigens. J Reprod Immunol. 1986; 9 (2): 95–102. doi: 10.1016/0165-0378(86)90003-3
- Zhao Y., Zhang X., Du N. et al. Immune checkpoint molecules on T-cell subsets of pregnancies with preeclampsia and gestational diabetes mellitus. J Reprod Immunol. 2020; 142: 103208. doi: 10.1016/j.jri.2020.103208
- Slattery M.M., Brennan C., O'leary M.J. et al. Human chorionic gonadotrophin inhibition of pregnant human myometrial contractility. BJOG. 2001; 108 (7): 704–8. doi: 10.1111/j.1471-0528.2001.00178.x
- Raffin-Sanson M. L., Ferré F., Coste J. et al. Pro-opiomelanocortin in human pregnancy: evolution of maternal plasma levels, concentrations in cord blood, amniotic fluid and at the feto-maternal interface. Eur J Endocrinol. 2000; 142 (1): 53–9. doi: 10.1530/eje.0.1420053
- Häkkinen L.M., Vuolteenaho O.J., Leppäluoto J.P. et al. Endothelin in maternal and umbilical cord blood in spontaneous labor and at elective cesarean delivery. Obstet Gynecol. 1992; 80 (1): 72–5.
- Lien E., Liabakk N.B., Austgulen R. Detection of soluble receptors for tumor necrosis factor, interleukin-2 and interleukin-6 in retroplacental serum from normal pregnant women. Gynecologic and obstetric investigation. 1996; 41 (1): 1–4. doi: 10.1159/000292024
- Stallmach T., Hebisch G., Joller H. et al. Expression pattern of cytokines in the different compartments of the feto-maternal unit under various conditions. Reprod Fertile Dev. 1995; 7 (6): 1573–80. doi: 10.1071/rd9951573
- Illei G., Morgan D.M. The distribution of polyamine oxidase activity in the fetomaternal compartments. Br J Obstet Gynaecol. 1979; 86 (11): 873–7. doi: 10.1111/j.1471-0528.1979.tb10714.x
- Mizutani S., Sumi S., Oka K. et al. In vitro degradation of oxytocin by pregnancy serum, placental subcellular fractions and purified placental aminopeptidases. Exp Clin Endocrinol. 1985; 86 (3): 310–6. doi: 10.1055/s-0029-1210503
- Панина О.Б., Самусевич А.Н., Щербакова Л.Н. и др. Антиоксидантный профиль ретроплацентарной крови при физиологической беременности и преэклампсии. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2022; 21 (3): 19–27 [Panina O.B., Samusevich A.N., Shcherbakova L.N. et al. Antioxidant status of retroplacental blood in uncomplicated pregnancy and preeclampsia. Gynecology, Obstetrics and Perinatology. 2022; 21 (3): 19–27 (in Russ.)]. doi: 10.20953/1726-1678-2022-3-19-27
Дополнительные файлы
