МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ВИДЫ МЕМБРАННЫХ ЛИПИДОВ МОРСКОГО АНЕМОНА Exaiptasia diaphana И ЕГО СИМБИОНТОВ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием исследованы молекулярные виды мембранных липидов морского анемона Exaiptasia diaphana и молекулярные виды гликолипидов его симбионтов. Всего было идентифицировано 82 молекулярных вида глицерофосфолипидов E. diaphana, основными из которых были холинглицерофосфолипид (PC) 16:0/22:6, этаноламинглицерофосфолипиды (PE) 18:1e/20:4 и 18:1e/20:5, серинглицерофосфолипид (PS) 18:0/22:4, инозигглицерофосфолипид (PI) 18:0/22:4 и церамидаминоэтилфосфонат (CAEP) 18:2b/16:0. У симбионтов было идентифицировано 36 молекулярных видов гликолипидов. Основными молекулярными видами были моногалактозилдиацилглицерол (MGDG) 18:4/18:5, дигалактозилдиацилглицеролы DGDG 18:3/18:5 и 18:4/18:4, сульфохиновозилдиацилглицерол (SQDG) 14:0/16:0. С помощью молекулярно-генетического анализа было установлено, что все колонии E. diaphana содержали динофлагелляты Breviolum minutum, Cladocopium thermophilum и Gerakladium endoclionum. Профиль молекулярных видов липидов организма-хозяина может выступать хемотаксономическим признаком, а галактолипиды симбионтов могут указывать на устойчивость к изменению температуры морской воды. Данное исследование вносит вклад в развитие липидомики организмов типа Cnidaria.

Об авторах

Е. Т. Бизикашвили

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН

Email: bilielena801@gmail.com
Россия, Владивосток

С. А. Козловский

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН

Россия, Владивосток

Е. В. Ермоленко

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН

Россия, Владивосток

К. В. Ефимова

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН

Россия, Владивосток

Т. В. Сикорская

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН

Россия, Владивосток

Список литературы

  1. Bogdanov M., Dowhan W. // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. P. 36827–36830. https://doi.org/10.1074/jbc.274.52.36827
  2. Daly M., Brugler M.R., Cartwright P., Collins A.G., Davson M.N., Fautin D.G., France S.C., Mcfadden C.S., Opresko D.M., Rodriguez E., Romano S.L., Stake J.L. // Zootaxa. 2007. V. 1668. P. 127–182. https://doi.org/10.5281/zenodo.180149
  3. Madio B., King G.F., Undheim E.A.B. // Mar. Drugs. 2019. V. 17. P. 325. https://doi.org/10.3390/md17060325.
  4. Garrett T.A., Schmeitzel J.L., Klein J.A., Hwang J.J., Schwarz J.A. // PLoS One. 2013. V. 8. P. e57975. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0057975
  5. Muscatine L. // Science. 1967. V. 156. P. 516–519. https://doi.org/10.1126/science.156.3774.516
  6. Dungan A.M., Hartman L.M., Tortorelli G., Belderok R., Lamb A.M., Pisan L., McFadden G.I., Blackall L.L., van Oppen M.J.H. // Symbiosis. 2020. V. 80. P. 195–206. https://doi.org/10.1007/s13199-020-00665-0
  7. Weis V.M., Davy S.K., Hoegh-Guldberg O., Rodriguez-Lanetty M., Pringle J.R. // Trends Ecol. Evol. 2008. V. 23. P. 369–376. https://doi.org/10.1016/j.tree.2008.03.004
  8. Yamashiro H., Okui H., Higa H., Chinen I., Sakai K. // Comp. Biochem. Phys. B. 1999. V. 122. P. 397–407. https://doi.org/10.1016/S0305-0491(99)00014-0
  9. Sikorskaya T.V., Imbs A.B. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2020. V. 46. P. 643–656. https://doi.org/10.1134/S1068162020050234
  10. Bishop D.G., Kenrick J.R. // Lipids. 1980. V. 15. P. 799–804. https://doi.org/10.1007/BF02534368
  11. Imbs A.B., Rybin V.G., Kharlamenko V.I., Dang L.P.T., Nguyen N.T., Pham K.M., Pham L.Q. // Russ. J. Mar. Biol. 2015. V. 41. P. 461–467. https://doi.org/10.1134/S1063074015060048
  12. Sikorskaya T.V. // Mar. Drugs. 2023. V. 21. P. 335. https://doi.org/10.3390/md21060335
  13. Rosset S., Koster G., Brandsma J., Hunt A.N., Postle A.D., D’Angelo C. // Coral Reefs. 2019. V. 38. P. 1241–1253. https://doi.org/10.1007/s00338-019-01865-x
  14. Sikorskaya T.V., Efimova K.V., Imbs A.B. // Phytochemistry. 2021. V. 181. P. 112579. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2020.112579
  15. Weis V.M. // Integr. Comp. Biol. 2019. V. 59. P. 845–855. https://doi.org/10.1093/icb/icz067
  16. Tehernov D., Gorbunov M.Y., de Vargas C., Narayan Yadav S., Milligan A.J., Häggblom M., Falkowski P.G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 37. P.13531–13535. https://doi.org/10.1073/pnas.0402907101
  17. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Gimanova T.T., Boroda A.V., Efimova K.V., Bogdanov M. // Commun. Biol. 2024. V. 7. P. 878. https://doi.org/10.1038/s42003-024-06578-8
  18. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Efimova K.V., Dang L.T.P. // Mar. Drugs. 2022. V. 20. P. 485. https://doi.org/10.3390/md20080485
  19. Dean J.M., Lodhi I.J. // Protein Cell. 2018. V. 9. P. 196–206. https://doi.org/10.1007/s13238-017-0423-5
  20. Lohner K. // Chem. Phys. Lipids. 1996. V. 81. P. 167–184. https://doi.org/10.1016/0009-3084(96)02580-7
  21. Kay J.G., Fairn G.D. // Cell Commun. Signal. 2019. V. 17. P. 126. https://doi.org/10.1186/s12964-019-0438-z
  22. Tomonaga N., Manabe Y., Sugawara T. // Lipids. 2017. V. 52. P. 353–362. https://doi.org/10.1007/s11745-011-3556-y
  23. Chintalahti M., Truax R., Stout R., Portier R., Losso J.N. // J. Agric. Food Chem. 2009. V. 57. P. 5201–5210. https://doi.org/10.1021/jf803818y
  24. Garrett T.A., Hwang J., Schmeitzel J.L., Schwarz J. // FASEB J. 2011. V. 25. P. 938.2. https://doi.org/10.1096/fasebj.25.1_supplement.938.2
  25. Imbs A.B., Latyshev N.A., Dautova T.N., Latypov Y.Y. // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2010. V. 409. P. 65–75. https://doi.org/10.3354/meps08622
  26. Flaim G., Oberlegger U., Anest A., Guella G. // Freshwater Biol. 2014. V. 59. P. 985–997. https://doi.org/10.1111/fwb.12321
  27. Känzler K., Eichenberger W., Radunz A. // Z. Naturforsch. C. J. Biosci. 1997. V. 52. T. 487–495.
  28. Höizl G., Dörmann P. // Annu. Rev. Plant Biol. 2019. V. 70. P. 51–81. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-050718-100202
  29. Boudière L., Michaud M., Petroutsos D., Rébeille F., Falconer D., Bastien O., Roy S., Finazzi G., Rolland N., Jouhet J., Block M.A., Maréchal E. // Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1837. P. 470–480. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2013.09.007
  30. Botana T.M., Chaves-Filho A.B., Inague A., Güth, A.Z., Saldanha-Correa F., Müller M.N., Sumida P.Y.G., Miyamoto S., Kellermann M.Y., Valentine R.C., Yoshinaga M.Y. // Limnol. Oceanogr. 2022. V. 67. P. 1456–1469. https://doi.org/10.1002/lno.12094
  31. Baumgartner S., Simakov O., Esherick L.Y., Liew Y.J., Lehnert E.M., Michell C.T., Li Y., Hambleton E.A., Guse A., Oates M.E., Gough J., Weis V.M., Aranda M., Pringle J.R., Voolstra C.R. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. P. 11893–11898. https://doi.org/10.1073/pnas.1513318112
  32. Thornhill D.J., Xiang Y., Pettay D.T., Zhong M., Santos S.R. // Mol. Ecol. 2013. V. 22. P. 4499–4515. https://doi.org/10.1111/mec.12416
  33. Nunez-Pons L., Bertocci I., Baghdasarian G. // Mar. Environ. Res. 2017. V. 130. P. 303–314. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2017.08.005
  34. Ramsby B.D., Hill M.S., Thornhill D.J., Steenhutzen S.F., Achlatis M., Lewis A.M., LaJeunesse T.C. // J. Psychol. 2017. V. 53. P. 951–960. https://doi.org/10.1111/jpy.12576
  35. Folch J., Lees M., Sloane-Stanley G.A. // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(18)64849-5
  36. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Imbs A.B. // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2020. V. 524. P. 151295. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2019.151295
  37. Imbs A.B., Dang L.P.T., Nguyen K.B. // PLoS One. 2019. V. 14. P. e0215759. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0215759
  38. Scholin C.A., Herzog M., Sogin M., Anderson D.M. // J. Psychol. 1994. V. 30. P. 999–1011. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1994.00999.x
  39. van Oppen M.J., McDonald B.J., Willis B., Miller D.J. // Mol. Biol. Evol. 2001. V. 18. P. 1315–1329. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a003916
  40. Altschul S.F., Gish W., Miller W., Myers E.W., Lipman D.J. // J. Mol. Biol. 1990. V. 215. P. 403–410. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2
  41. Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. // Brief Bioinform. 2019. V. 20. P. 1160–1166. https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
  42. Hume B.C., D’Angelo C., Smith E.G., Stevens J.R., Burt J., Wedermann J. // Sci. Rep. 2015. V. 5. P. 8562. https://doi.org/10.1038/srep08562
  43. Puillandre N., Brouillet S., Achaz G. // Mol. Ecol. Resour. 2021. V. 21. P. 609–620. https://doi.org/10.1111/1755-0998.13281
  44. Nguyen L.T., Schmidt H.A., von Haeseler A., Minh B.Q. // Mol. Biol. Evol. 2015. V. 32. P. 268–274. https://doi.org/10.1093/molbev/msu300
  45. Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F., von Haeseler A., Jermlin L.S. // Nat. Methods. 2017. V. 14. P. 587–589. https://doi.org/10.1038/nmeth.4285
  46. Guindon S., Dufayard J.F., Lefort V., Anisimova M., Hordijk W., Gascuel O. // Syst. Biol. 2010. V. 59. P. 307–321. https://doi.org/10.1093/sysbio/syq010
  47. Hoang D.T., Chermomor O., von Haeseler A., Minh B.Q., Vinh L.S. // Mol. Biol. Evol. 2018. V. 35. P. 518–522. https://doi.org/10.1093/molbev/msx281
  48. Anisimova M., Gil M., Dufayard J.F., Dessimoz C., Gascuel O. // Syst. Biol. 2011. V. 60. P. 685–699. https://doi.org/10.1093/sysbio/syr041
  49. Viso A.C., Marty J.C. // Phytochemistry. 1993. V. 34. P. 1521–1533. https://doi.org/10.1016/s0031-9422(00)90839-2
  50. Rezanka T., Siristova L., Matoullková D., Sigler K. // Lipids. 2011. V. 46. P. 765–780. https://doi.org/10.1007/s11745-011-3556-y

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».